[صفحه اصلی ]   [Archive] [ English ]  
:: صفحه اصلي :: درباره نشريه :: آخرين شماره :: تمام شماره‌ها :: جستجو :: ثبت نام :: ارسال مقاله :: تماس با ما ::
:: دوره 21، شماره 4 - ( دوماه نامه 1396 ) ::
جلد 21 شماره 4 صفحات 335-344 برگشت به فهرست نسخه ها
بررسی اثر عصاره الکلی دانه ارزن پروسو (.Panicum miliaceum L) بر تراکم نورونی ناحیه هیپوکامپ موش سوری
آرزو برنای رودی، مریم طهرانی پور* ، ناصر مهدوی شهری
دانشیار گروه زیست شناسی، واحد مشهد، دانشگاه آزاد اسلامی ، maryam_tehranipour@mshdiau.ac.ir
چکیده:   (805 مشاهده)
سابقه و هدف: تشکیلات هیپوکامپ بخشی از لوب گیجگاهی را به­ خود اختصاص می­ دهد و خود از این بخش­ ها تشکیل شده است: جسم هیپوکامپ، شکنج دندان ه­ای و سوبیکولوم. گیاه ارزن حاوی پروتئین­ ها، مواد معدنی، ویتامین­ ها و آنتی ­اکسیدان­ های مورد نیاز برای حفظ حیات و سلامت سلول­ های بدن پستانداران است. این مطالعه به­ منظور تعیین اثر عصاره الکلی دانه گیاه ارزن پروسو (Panicum miliaceum L.) بر تراکم نورونی ناحیه هیپوکامپ انجام شده است.
مواد و روش­ ها: در این مطالعه تجربی 24 سر موش سوری به 4 گروه تقسیم شدند. عصاره الکلی دانه گیاه ارزن پروسو به روش سوکسله تهیه شده و به سه گروه تیمار به ­ترتیب با دوزهای 25، 50 و 75 میلی­ گرم بر کیلوگرم به روش داخل صفاقی و به ­مدت 21 روز تزریق شد. گروه کنترل نرمال سالین دریافت نمود. در پایان مطالعه حیوانات بیهوش شده و پس از پرفیوژن، مغز از جمجمه خارج گردید. بعد از انجام مراحل پاساژ بافتی از مغز برش تهیه شده و رنگ­آمیزی شد. سپس، تراکم نورونی نواحی مختلف هیپوکامپ بررسی شد.
نتایج: نتایج نشان داد که تراکم نورونی در نواحی CA1 و CA3 گروه تیمار شده با دوز mg/Kg 50 و در تمام نواحی هیپوکامپ (CA1,CA2,CA3) گروه تیمار شده با دوز mg/Kg 75 عصاره الکلی افزایش معنی­ داری نسبت به گروه کنترل داشته است (0/05<P).
نتیجه­ گیری: این مطالعه نشان داد که عصاره الکلی دانه گیاه ارزن پروسو باعث افزایش تراکم نورونی و القای نورون­زایی در هیپوکامپ موش سوری می ­گردد.
واژه‌های کلیدی: ارزن پروسو، عصاره الکلی، تراکم نورونی، هیپوکامپ
متن کامل [PDF 675 kb]   (195 دریافت)    
نوع مطالعه: پژوهشي | موضوع مقاله: عمومى
دریافت: ۱۳۹۶/۲/۱۱ | پذیرش: ۱۳۹۶/۵/۲۴ | انتشار: ۱۳۹۶/۷/۱۶
فهرست منابع
1. Gorden M.s. Neurobiology. 3rd ed. Oxford university press; 2000. p. 618-34.
2. Guyton AC, Hall JE. Textbook of Medical physiology. 3rd. Philadelphia: Saunders; 2008. p. 645-643.
3. Jahanshahi M, Sadeghi Y, Hosseini A, Naghdi N, Piriaie A. Working memory learning method and astrocytes number in different subfields of rat’s hippocampus. J Animal Veterinary 2008; 3(1): 31-28.
4. Achille G, Synthia H. Ganadotropins and Progestogens: Obligatory developmental function during early embryogenesis and their role in adult neurogenesis, neuroregeneration and neurodegeneration. Academic Press 2011; 1: 375-305.
5. Taupin P. The hippocampus: neurotransmission and plasticity in the nervous system. 1st. New York: Nova Biomedical Books; 2008. P. 25-20.
6. Baker RD. Millet production. Cooperative Extension Service, New Mexico State 1996; 1: 41-1.
7. Kazemi Arbat H. private farming. Jahad University Press 2003; p. 228-17. [Persian]
8. Hulse JH, Laing EM, Pearson OE. Sorghum and the millets: their composition and nutritive value. New York: Academic Press; 1980. P. 997-1.
9. Kalinova J, Moudry J. Content and quality of protein in proso millet (Panicum miliaceum L.) varieties. Plant Foods Hum Nutr 2006; 9: 61-45.
10. Chandrasekara A, Shahidi F. Content of insoluble bound phenolics in millets and their contribution to antioxidant capacity. J Agric Food Chem 2010; 58: 6706-14.
11. Mehla J, Pahuja M, Gupta YK. Streptozotocin- Induced Sporadic Alzheimer's Disease: Selection of Appropriate Dose. J Alzheimers Dis 2013; 33(1): 21-17.
12. Williams R, Spencer J. Flavonoids. Cognition and dementia: actions, mechanisms and potential therapeutic utility for Alzheimer’s disease. Free Radical Bio Med 2011; 127(3): 213-210.
13. Andres-Lacueva CB, Shukitt-Hale RL, Galli O, Jauregui RM, et al. Anthocyanins in Aged Blueberry-Fed Rats Are Found Centrally and May Enhance Memory. Nutr Neurosci 2005; 8(2): 111-20.
14. Querfurth HW, LaFerla FM. Alzheimer's Disease. N Engl J Med 2010; 362(4): 329-44.
15. Tahmasebi S, Heidarien N, Mohagerani HR. Effects of Crataegus Aronia on Passive Avoidance Learning in Wistar Male Rats. J Cellular Molecular Biotechnol News 2013: 86-79.
16. Choi Y, Jeong H-S, Lee J. Antioxidant activity of methanolic extracts from some grains consumed in Korea. Food Chem 2007; 103(1): 130-8.
17. Kumar S, Pandey AK. Chemistry and biological activities of flavonoids: an overview. Scientific World J 2013; 20:750-162.
18. Pradeep P.M, Yadahally N, Sreerma N. Soluble and bound phenolics of two different millet genera and their milled fractions: Comparative evaluation of antioxidant properties and inhibitory effects on starch hydrolysing enzyme activities. J Functional Foods 2017; 35:693-685.
19. Valko M, Rhodes CJ, Moncol J, Izakovic M, Mazur M. Free radicals, metals and antioxidants in oxidative stress-induced cancer. Chemico-Biol Int 2006; 160: 40-1.
20. Truswell AS. Cereal grain and coronary heart disease. Eur J Clin Nutr 2002; 56(1): 4-1.
21. Tehranipour M, Sabzalizade M. Effect of Cannabis sativa alcoholic extract on hippocampus neuronal density in Rats. J Gorgan Univ Med Sci 2011; 13(2): 15-9. [in Persian]
22. Behnam-rasouli M, Nikravesh M, Mahdavi N, Tehranipour M. Post-Operative time effects after sciatic nerve crush on the number of alpha motoneurons, using a stereological counting method (disector). Iran Biomedical J 2000; 4(1): 45-9.
23. Kempermann G, Kuhn H.G, Gage F.H. More hippocampal neurons in adult mice living in an enriched environment. Nature 1997; 386: 495-493.
24. Gage F. Brain repair yourself. Scientific American 2003; 289(3): 95-87.
25. Rendeiro C, Rhodes JS, Spencer JP. The mechanisms of action of flavonoids in the brain: Direct versus indirect effects. Neurochem Int 2015; 89: 139-126.
26. Wang H, Wang H, Cheng H, Che Z. Ameliorating effect of luteolin on memory impairment in an Alzheimer's disease model. Mol Med Rep 2016; 13: 4220–15.
27. Oberbauer E, Urmann C, Steffenhagen C, Bieler L, Brunner D, Furtner T, et al. Chroman-like cyclic prenylflavonoids promote neuronal differentiation and neurite outgrowth and are neuroprotective. J Nutr Biochem 2013; 24: 1962–53.
28. Macready AL, Kennedy OB, Ellis JA, Williams CM, Spencer JP, Butler LT. Flavonoids and cognitive function: a review of human randomized controlled trial studies and recommendations for future studies. Genes Nutr 2009; 4: 227-42.
29. Ashrafpour M, Parsaei S, Sepehri H. Quercetin improved spatial memory dysfunctions in rat model of intracerebroventricular streptozotocin-induced sporadic Alzheimer's disease. Natl J Physiol 2015; 5: 411-5.
30. Vauzour D, Vafeiadou K, Rodriguez-Mateos A, Rendeiro C, Spencer PE. The neuroprotective potential of flavonoids: a multiplicity of effects. Genes Nutr 2008 Dec; 3(3-4): 115-26.
31. Pocernich CB, Lange ML, Sultana R, Butterfield DA. Nutritional approaches to modulate oxidative stress in Alzheimer's disease. Curr Alzheimer Res 2011; 8: 469-52.
32. Lei X, Chao H, Zhang Z, Lv J, Li S, Wei H, et al. Neuroprotective effects of quercetin in a mouse model of brain ischemic/reperfusion injury via anti-apoptotic mechanisms based on the Akt pathway. Mol Med Rep 2015; 12: 3696–88.
33. Abd El, Baky AE. Quercetin protective action on oxidative stress, sorbitol, insulin risistance and β-cells function in expermintal diabetic rats. International J Pharmaceutical Studies Res 2011; 2(2): 7-1.
34. Heo HJ, Lee CY. Protective effects of quercetin and vitamin C against oxidative stress-induced neurodegeneration. J Agric Food Chem 2004; 52(25): 7514-7.
35. Sriraksa N, Wattanathorn J, Muchimapura S, Tiamkao S, Brown K, Chaisiwamongkol K. Cognitive-Enhancing Effect of Quercetin in a Rat Model of Parkinson's Disease Induced by 6- Hydroxydopamine. Evidence- Based Complementary and Alternative Medicine (eCAM). 2012; 212: Article ID 823206.
36. Rattray M. Is there nicotinic modulation of nerve growth factor? Implications for cholinergic therapies in Alzheimer's disease. Biol Psychiatry 2001; 49(3): 185-93.
37. Kosaka K, Yokoi T. Carnosic Acid, a component of Rosemary (Rosmarinusofficinalis L.), promotes synthesis of nerve growth factor in T98G human glioblastoma cells. Biol Pharm Bull 2003; 26: 1622-1620.
38. Rajasekaran NS, Nithya M, Rose C, Chandra TS. The effect of finger millet feeding on the early responses during the process of wound healing in diabetic rats. Biochim Biophys Acta 2004; 1689(3–4): 190-201.
ارسال پیام به نویسنده مسئول

ارسال نظر درباره این مقاله
نام کاربری یا پست الکترونیک شما:

CAPTCHA code


XML   English Abstract   Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

Bornarodi A, Tehranypour M, Mahdavi-Shahri N. The effect of alcoholic extract of Panicum miliaceum L. seed on hippocampus neuronal density in male mouse. Feyz. 2017; 21 (4) :335-344
URL: http://feyz.kaums.ac.ir/article-1-3327-fa.html

برنای رودی آرزو، طهرانی پور مریم، مهدوی شهری ناصر. بررسی اثر عصاره الکلی دانه ارزن پروسو (.Panicum miliaceum L) بر تراکم نورونی ناحیه هیپوکامپ موش سوری. دوماه نامه علمي ـ پژوهشي فيض. 1396; 21 (4) :335-344

URL: http://feyz.kaums.ac.ir/article-1-3327-fa.html



دوره 21، شماره 4 - ( دوماه نامه 1396 ) برگشت به فهرست نسخه ها
مجله علمی پژوهشی فیض ::: دانشگاه علوم پزشکی کاشان KAUMS Journal ( FEYZ )
Persian site map - English site map - Created in 0.07 seconds with 31 queries by YEKTAWEB 3731