[صفحه اصلی ]   [Archive] [ English ]  
:: صفحه اصلي :: درباره نشريه :: آخرين شماره :: تمام شماره‌ها :: جستجو :: ثبت نام :: ارسال مقاله :: تماس با ما ::
:: دوره 21، شماره 1 - ( دوماه نامه 1396 ) ::
جلد 21 شماره 1 صفحات 74-82 برگشت به فهرست نسخه ها
تعیین الگوی مقاومت آنتی بیوتیکی ایزوله های کلبسیلا پنومونیه جدا شده از عفونت های دستگاه ادراری بیماران بستری در بیمارستان پیامبران شهر تهران طی سال 1393
مرضیه توکل، حسن ممتاز
استاد گروه میکروبیولوژی، واحد شهرکرد، دانشگاه آزاد اسلامی، شهرکرد، ایران ، hamomtaz@yahoo.com
چکیده:   (1094 مشاهده)

سابقه و هدف: عفونت­ های دستگاه ادراری دومین عفونت شایع در انسان هستند که عمده­ترین باکتری­ های ایجاد کننده این عفونت­ ها، اشریشیاکلی و کلبسیلا پنومونیه می ­باشد. هدف از انجام این مطالعه تعیین الگوی مقاومت آنتی­ بیوتیکی و بررسی شیوع ژن­های کد کننده مقاومت نسبت به آنتی­ بیوتیک­ ها در ایزوله ­های کلبسیلا پنومونیه جدا شده از عفونت­ های دستگاه ادراری بود.

مواد و روش­ ها: تعداد 50 ایزوله کلبسیلا پنومونیه از 122 نمونه مربوط به عفونت­ های ادراری بیماران بستری شده در بخش ­های مختلف بیمارستان پیامبران شهر تهران طی سال 1393 جدا گردید و توسط تست ­های بیوشیمیایی استاندارد تعیین هویت شدند. الگوی حساسیت آنتی­ بیوتیکی در ایزوله­ ها با استفاده از روش دیسک دیفوژن نسبت به 10 آنتی ­بیوتیک تعیین گردید. فراوانی حضور ژن­ های کد کننده مقاومت آنتی­ بیوتیکی شامل ژن­های aadA1، aac(3)-IV، sul1، blaSHV، Cat1، cmlA، tetA، tetB، dfrA1، CITM و qnr در ایزوله ­ها با استفاده از روش PCR تعیین شد.

نتایج: بیش­ترین مقاومت آنتی­ بیوتیکی ایزوله­ های کلبسیلا پنومونیه مربوط به آنتی ­بیوتیک تتراسیکلین بود. تنها 2 درصد از ایزوله ­ها نسبت به جنتامایسین و ایمی­پنم مقاوم بودند. در بررسی شیوع ژن­ها­ی مقاومت آنتی بیوتیکی، 64 درصد از ایزوله­ ها دارای ژن tetA و 4 درصد از آن­ ها ژن مقاومت به جنتامایسین (aac(3)-IV) را دارا بودند.

نتیجه ­گیری: شیوع ژن ­های کد کننده مقاومت آنتی­ بیوتیکی می ­تواند نقش مهمی در ایجاد و انتقال مقاومت آنتی­ بیوتیکی داشته باشد و این می ­تواند به­ دلیل مصرف بی­رویه آنتی­ بیوتیک ­ها باشد.

واژه‌های کلیدی: عفونت های دستگاه ادراری، کلبسیلا پنومونیه، الگوی مقاومت آنتی بیوتیکی
متن کامل [PDF 326 kb]   (394 دریافت)    
نوع مطالعه: پژوهشي | موضوع مقاله: عمومى
دریافت: ۱۳۹۵/۱۲/۱۱ | پذیرش: ۱۳۹۵/۱۲/۱۱ | انتشار: ۱۳۹۵/۱۲/۱۱
فهرست منابع
1. Kim JM, Park ES, Jeong JS, Kim KM, Kim JM, Oh HS, et al. Multicenter surveillance study for nosocomial infections in major hospitals in Korea. Nosocomial Infection Surveillance Committee of the Korean Society for Nosocomial Infection Control. Am J Infect Control 2000; 28(6): 454-8.
2. Larypoor M, Frsad S. Evaluation of nosocomial infections in one of hospitals of Qom, 2008. Iran J Med Microbiol 2011; 5(3): 7-17. [in Persian]
3. Sefton AM. The impact of resistance on the management of urinary tract infections. Int J Antimicrob Agents 2000; 16(4): 489-91.
4. Ahanjan M, Haghshenas MR, Naghshvar F, Bairamvand E. Survey and detect of bacteria caused UTI in patients referring to the Imam Khomeini hospital in Sari city 1388-89. J Mazand Univ Med Sci 2013; 22(Suppl 1): 82-6. [in Persian]
5. Yankowitz J, Niebyl JR. Drug therapy in pregnancy. 3rd ed. Philadelphia: Lippincott Williams & Wilkins; 2001. p. 63-72.
6. DelzellJr JE, Lefevre ML. Urinary tract infections during pregnancy. Am Fam Physician 2000; 61(3): 713-20.
7. Falade AG, Ayede AI. Epidemiology, etiology and management of childhood acute community-acquired pneumonia in developing countries--a review. Afr J Med Med Sci 2011; 40(4): 293-308.
8. Livermore DM. Current epidemiology and growing resistance of gram-negative pathogens. Korean J Intern Med 2012; 27(2): 128-42.
9. Lu PL, Liu YC, Toh HS, Lee YL, Liu YM, Ho CM, et al. Epidemiology and antimicrobial susceptibility profiles of Gram-negative bacteria causing urinary tract infections in the Asia-Pacific region: 2009-2010 results from the Study for Monitoring Antimicrobial Resistance Trends (SMART). Int J Antimicrob Agents 2012; 40 Suppl: S37-43.
10. Gootz TD. The global problem of antibiotic resistance. Crit Rev Immunol 2010; 30(1): 79-93.
11. Jalalpoor SH, KasraKermanshahi R, Nouhi AS, ZarkeshIsfahani H. Comparing the frequency of β-lactamase enzyme in isolated nosocomial infectious bacteria. JRMS 2009; 8(3): 203-14. [in Persian]
12. Boucher Y, Labbate M, Koenig JE, Stokes HW. Integrons: mobilizable platforms that promote genetic diversity in bacteria. Trends Microbiol 2007; 15(7): 301-9.
13. Lapierre L, Cornejo J, Borie C, Toro C, San Martín B. Genetic characterization of antibiotic resistance genes linked to class 1 and class 2 integrons in commensal strains of Escherichia coli isolated from poultry and swine. Microb Drug Resist 2008; 14(4): 265-72.
14. Mahon CR, Lehman DC, Manuselis G. Textbook of diagnostic microbiology. 5th ed. New York: Saunders; 2014.
15. Clinical and Laboratory Standards Institute. Performance standards for antimicrobial disk susceptibility testing; 20th informational supplement. CLSI/NCCLS M100-S20. Clinical and Laboratory Standards Institute, Wayne, Pa; 2010.
16. Forbes AB, Sahm DF, Weissfeld AS. Bailey and Scott's Diagnostic Microbiology, 12th ed. Philadelphia. Mosby; 2007. p. 236-40, 365-584.
17. Liu Y, Liu C, Zheng W, Zhang X, Yu J, Gao Q, et al. PCR detection of Klebsiella pneumoniae in infant formula based on 16S–23S internal transcribed spacer. Int J Food Microbiol 2008; 125(3): 230–5.
18. Van TT, Chin J, Chapman T, Tran LT, Coloe PJ. Safety of rawmeat and shellfish in Vietnam: an analysis of Escherichia coli isolations for antibiotic resistance and virulence genes. Int J Food Microbiol 2008; 124(3): 217-23.
19. Randall LP, Cooles SW, Osborn MK, Piddock LJ, Woodward MJ. Antibiotic resistance genes, integrons and multiple antibiotic resistance in thirty-fiveserotypes of Salmonella enterica isolated from humans and animals in the UK. J Antimicrob Chemother 2004; 53(2): 208-16.
20. Toro CS, Farfán M, Contreras I, Flores O, Navarro N, Mora GC, et al. Geneticanalysis of antibiotic-resistance determinants in multidrug-resistant Shigella strains isolated from Chileanchildren. Epidemiol Infect 2005; 133(1): 81-6.
21. Mammeri H, Van De Loo M, Poirel L, Martinez-Martinez L, Nordmann P. Emergence of plasmid-mediated quinolone resistance in Escherichia coli in Europe. Antimicrob Agents Chemother 2005; 49(1): 71-6.
22. Stanton SL, Dwyer PL. Urinary tract infection in female. 1st ed. London: Marlin Duntize; 2000. p. 304.
23. Centers for Disease Control and Prevention (CDC). Perinatal group B streptococcal disease after universal screening recommendations. United States, 2003-2005. MMWR Morb Mortal Wkly Rep 2007; 56(28): 701-5.
24. Rijavec M, StarcicErjavec M, Ambrozic Avgustin J, Reissbrodt R, Fruth A, Krizan-Hergouth V, et al. High prevalence of multidrug resistance and ran dom distribution of mobile genetic elements among uropathogenic Escherichia coli (UPEC) of the four major phylogenetic groups. Curr Microbiol 2006; 53(2): 158–62.
25. Tsering DC, Das S, Adhiakari L, Pal R, Singh TS. Extended Spectrum Beta-lactamase Detection in Gram-negative Bacilli of Nosocomial Origin. J Glob Infect Dis 2009; 1(2): 87-92.
26. Mathai E, Grape M, Kronvall G. Integrons and multidrug resistance among Escherichia coli causing communityacquired urinary tract infection in southern India. APMIS 2004; 112(3): 159–64.
27. Gulsun S, Oguzoglu N, Inan A, Ceran N. The virulence factors and antibiotic sensitivities of Escherichia coli isolated from recurrent urinary tract infections. Saudi Med J 2005; 26(11): 1755–58.
28. Tariq N, Jaffery T, Ayub R, Alam AY, Javid MH, Shafique S. Frequency and antimicrobial susceptibility of aerobic bacterial vaginal isolates. J Coll Physicians Surg Pak 2006; 16(3): 196–99.
29. SoltanDalal MM, Miremadi S, SharifyYazdi M K, RastegarLari A, Rajabi Z, AvadisYans S. Antimicrobial Resistance Trends Of Klebsiella Spp. Isolated From Patients In Imam Khomeini Hospital. J Payavard Salamat 2012; 6(4): 275-81. [in Persian]
30. Amin A, Ghumro PB, Hussain S, Hameed A. Prevalence of antibiotic resistance among clinical isolates of Klebsiella pneumonia isolated from a Tertiary Care Hospital in Pakistan. Malays J Micro 2009; 5(2): 81-6.
31. Ishii Y, Alba J, Kimura S, Shiroto K, Yamaguchi K. Evaluation of antimicrobial activity of Blactam antibiotics using E-test against clinical isolates from 60 medical centers in Japan. J Antimicrob Agent 2005; 25(4): 296-301.
32. Al Shara MA. Emerging Antimicrobial Resistance of Klebsiella pneumonia strains Isolated from Pediatric Patients in Jordan. Iraqi J Med 2011; 7(2): 29-32.
33. Du J, Li P, Liu H, Lü D, Liang H, Dou Y. Phenotypic and molecular characterization of multidrug resistant Klebsiella pneumoniae isolated from a university teaching hospital, China. PloS One 2014; 9(4): e95181.
34. Dormanesh B, Mirnejad R, Khodaverdi Dariyan E, Momtaz H, Yahaghi E, Safarpour Dehkordi F, et al. Characterization and study the antibiotic resistance of Uropathogenic Escherichia coli isolated from pediatrics with pyelonephritis and cystitis in Iran. Iran J Med Microbiol 2013; 7(2): 27-39.
35. Machado E, Coque TM, Canton R, Novais A, Sousa JC, Baquero F, et al. Portuguese Resistance Study Group. High diversity of extended-spectrum betalactamases among clinical isolates of Enterobacteriaceae from Portugal. J Antimicrob Chemother 2007; 60(6): 1370-74.
36. Khorshidi A, Moazen Z, Rohani M, Moniri R, shagari GH. Prevalence of TEM and SHV1 genes in Kelebsiella pneumoniea with ESBL. J Mil Med 2009; 3(11): 153-49. [in Persian]
37. Shams E, Firoozeh F, Moniri R, Zibaei M. Prevalence of Plasmid-Mediated Quinolone Resistance Genes among Extended-Spectrum β-Lactamase-Producing Klebsiella pneumoniae Human Isolates in Iran. J Pathog 2015; 2015: 434391.
38. Shibl A, Al-Agamy M, Memish Z, Senok A, Khader SA, Assiri A. The emergence of OXA-48- and NDM-1-positive Klebsiella pneumoniae in Riyadh, Saudi Arabia. Int J Infect Dis 2013; 17(12): 1130–3.
39. Teo J, Ngan G, Balm M, Jureen R, Krishnanb P, Lina R. Molecular characterization of NDM-1producing Enterobacteriaceae isolates in Singapore hospitals. Western Pac Surveill Response J 2012; 3(1): 19-24.
ارسال پیام به نویسنده مسئول

ارسال نظر درباره این مقاله
نام کاربری یا پست الکترونیک شما:

کد امنیتی را در کادر بنویسید >


XML   English Abstract   Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

Tavakol M, Momtaz H. Determination of antibiotic resistance profile in Klebsiella pneumonia strains isolated from urinary tract infections of patients hospitalized in Peyambaran hospital (Tehran-Iran). Feyz. 2017; 21 (1) :74-82
URL: http://feyz.kaums.ac.ir/article-1-3286-fa.html

توکل مرضیه، ممتاز حسن. تعیین الگوی مقاومت آنتی بیوتیکی ایزوله های کلبسیلا پنومونیه جدا شده از عفونت های دستگاه ادراری بیماران بستری در بیمارستان پیامبران شهر تهران طی سال 1393. دوماه نامه علمي ـ پژوهشي فيض. 1396; 21 (1) :74-82

URL: http://feyz.kaums.ac.ir/article-1-3286-fa.html



دوره 21، شماره 1 - ( دوماه نامه 1396 ) برگشت به فهرست نسخه ها
مجله علمی پژوهشی فیض ::: دانشگاه علوم پزشکی کاشان KAUMS Journal ( FEYZ )
Persian site map - English site map - Created in 0.06 seconds with 31 queries by YEKTAWEB 3660