[صفحه اصلی ]   [Archive] [ English ]  
:: صفحه اصلي :: درباره نشريه :: آخرين شماره :: تمام شماره‌ها :: جستجو :: ثبت نام :: ارسال مقاله :: تماس با ما ::
:: دوره 21، شماره 1 - ( دوماه نامه 1396 ) ::
جلد 21 شماره 1 صفحات 19-27 برگشت به فهرست نسخه ها
اثر عصاره آبی هسته انبه (Mangifera indica) بر فعالیت پایه عضلات صاف رحم موش صحرایی بکر: نقش گیرنده های موسکارینی
مهدی نورالدینی* ، معصومه دهقان شیبانی، بهرنگ علنی
دانشیار مرکز تحقیقات فیزیولوژی، دانشگاه علوم پزشکی کاشان ، mnoureddini@yahoo.com
چکیده:   (1167 مشاهده)

سابقه و هدف: گیاه انبه از تیره پسته‌ایان است و اثرات عصاره­های حاصل از ساقه، برگ، میوه و هسته انبه روی عملکرد انقباضی عضلات صاف گزارش شده است. در این تحقیق اثر مهار گیرنده­ های کولینرژیک موسکارینی روی تاثیر عصاره آبی هسته انبه (Mangifera indica) بر فعالیت پایه عضلات صاف رحم موش صحرایی بکر مورد بررسی قرار گرفت.

مواد و روش ­ها: در این تحقیق تجربی 24 قطعه میانی رحم موش ­های سالم بکر در حمام بافت حاوی محلول تایرود کربوژنه و تحت تاثیر کشش یک گرم قرار گرفتند. اثرات کاربرد تجمعی غلظت­ های عصاره آبی هسته انبه (0/002، 0/02، 0/2، 2، 20، 200 و 2000 میکرو­گرم بر میلی ­لیتر) و یا حامل عصاره (محلول تایرود) در حضور و عدم حضور آتروپین بر قدرت، فرکانس و فعالیت انقباضی عضلات صاف رحمی به­ روش ایزومتریک بررسی شد.

نتایج: غلظت­ های تجمعی 0/002 تا 20 میکروگرم بر میلی ­لیتر عصاره آبی هسته انبه به­ طور معنی­ داری سبب کاهش قدرت، فعالیت و فرکانس انقباضی عضله صاف رحمی گردید و در غلظت­ های 200 و 2000 عصاره، عملکرد انقباضی به حالت پایه برگشت. آتروپین یک میکرومولار تغییر معنی­ داری در اثرات حاصل از کاربرد تجمعی عصاره‌ روی قدرت و فعالیت انقباضی عضله صاف رحم به ­وجود نیاورد، ولی در غلظت­ های پایین عصاره توانست فرکانس انقباضی را به­ طور معنی داری تشدید نماید.

نتیجه­ گیری:احتمالا اثرات عصاره آبی هسته انبه بر عملکرد انقباضی عضلات صاف رحمی از طریق گیرنده ­های موسکارینی صورت نپذیرفته و تشدید اثر عصاره توسط آتروپین روی فرکانس از طریق سایر گیرنده­ ها صورت می­ پذیرد.

واژه‌های کلیدی: عصاره آبی هسته انبه، گیرنده کولینرژیک موسکارینی، عضله صاف رحم، موش صحرایی
متن کامل [PDF 375 kb]   (336 دریافت)    
نوع مطالعه: پژوهشي | موضوع مقاله: عمومى
دریافت: ۱۳۹۵/۱۲/۸ | پذیرش: ۱۳۹۵/۱۲/۸ | انتشار: ۱۳۹۵/۱۲/۸
فهرست منابع
1. Chang E. Preterm birth and the role of neuroprotection. BMJ 2015; 350: g6661.
2. Dolan SM. Genetic and environmental contributions to racial disparities in preterm birth. Mt Sinai J Med 2010; 77(2): 160-65.
3. Swaggart KA, Pavlicev M, Muglia LJ.Genomics of Preterm Birth. Cold Spring Harb Perspect Med 2015; 5(2): a023127.
4. Engstrøm T. Myometrial receptors in rat parturition. Dan Med Bull 2003; 50(3): 219-37.
5. López Bernal A. The regulation of uterine relaxation. Semin Cell Dev Biol 2007; 18(3): 340-47.
6. Darios ES, Seitz B, Watts SW. Smooth muscle pharmacology in the isolated virgin and pregnant rat uterus and cervix. J Pharmacol Exp Ther 2012; 341(3): 587-96.
7. Crankshaw DJ. Pharmacological techniques for the in vitro study of the uterus. J Pharmacol Toxicol Methods 2001; 45(2): 123-40.
8. Varol FG, Hadjiconstantinou M, Zuspan FP, Neff NH. Pharmacological characterization of the muscarinic receptors mediating phosphoinositide hydrolysis in rat myometrium. J Pharmacol Exp Ther 1989; 249(1): 11-5.
9. Vogel JP, Nardin JM, Dowswell T, West HM, Oladapo OT. Combination of tocolytic agents for inhibiting preterm labour. Cochrane Database Syst Rev 2014; (7): CD006169.
10. Hösli I, Sperschneider C, Drack G, Zimmermann R, Surbek D, Irion O. Swiss Society of Obstetrics and Gynecology. Tocolysis for preterm labor: expert opinion. Arch Gynecol Obstet 2014; 289(4): 903-9.
11. Cordell GA, Colvard MD. Natural products and traditional medicine: turning on a paradigm. J Nat Prod 2012; 75(3): 514-25.
12. Bielory L, Russin J, Zuckerman GB. Clinical efficacy, mechanisms of action, and adverse effects of complementary and alternative medicine therapies for asthma. Allergy Asthma Proc 2004; 25(5): 283-91.
13. Mills E, Dugoua JJ, Perri D, Koren G. Herbal medicines in pregnancy and lactation: an evidence-based approach: CRC Press; 2013.
14. Ahangarpour A, Heidari R, Abdollahzadeh M, Oroojan AA. Antispasmodic Effects of Aqueous and Hydroalcoholic Punica granatum Flower Extracts on the Uterus of Non-pregnant Rats. J Reprod Infertil 2012; 13(3): 138-42.
15. Noureddini M, Namdar F, Hidari A, Benafshe H. The effect of aqueous extract of pomegranate seed on rat uterine smooth muscle contractility. Physiol Pharmacol 2014; 17(4): 461-8. [in Persian]
16. Habibian R, Rafieian Kopaei M, Mohammadzade Z. Effect of hydroalcoholic extract of kelussia odoratissima mozaffarian on uterus contractions of mature rats. Quarterly Horizon Med Sci 2015; 21(3): 169-74. [in Persian]
17. Eslamian SS, Sharifani M. Humid Region Crops. Aeij Publishing; 2010. P. 145-78. [In Persian]
18. Shah KA, Patel MB, Patel RJ, Parmar PK. Mangifera Indica (mango). Pharmacogn Rev 2010; 4(7): 42-8.
19. Bragança VL, Melnikov P, Zanoni LZ. Trace element in fruit juices. Biol Trace Elem Res 2012; 146(2): 256-61.
20. Arif M, Fareed S, Rahman MA. Stress relaxant and antioxidant activities of acid glycoside from Spondias mangifera fruit against physically and chemically challenged albino mice. J Pharm Bioallied Sci 2016; 8(1): 58-63.
21. Parvez GM. Pharmacological activities of mango (Mangifera Indica): A review. J Pharmacognosy Phytochemistry 2016; 5(3): 1-7
22. Gondi M, Basha SA, Bhaskar JJ, Salimath PV, Rao UJ. Anti-diabetic effect of dietary mango (Mangifera indica L.) peel in streptozotocin-induced diabetic rats. J Sci Food Agric 2015; 95(5): 991-9.
23. Mohanvelu R, Madhuri AS, Ramabhimaiah S. Evaluation of analgesic activity of aqueous extract of Mangifera indica leaves in albino rats. Int J Basic Clin Pharmacol 2015; 4(1): 107-10.
24. Rivera DG, Balmaseda IH, León AA, Hernández BC, Montiel LM, et al. Anti-allergic properties of Mangifera indica L. extract (Vimang) and contribution of its glucosylxanthone mangiferin. J Pharm Pharmacol 2006; 58(3): 385-92.
25. Prabhu K, Rajan S. Assessment of Antiulcer Activity of Ethanolic Extract of Mangifera indica Seed Kernel Using Acid Ethanol Induced Ulcer Model. Int J Current Microbiol App Sci 2015; 4(4): 854-60.
26. Yakubu MT, Salimon SS. Antidiarrhoeal activity of aqueous extract of Mangifera indica L. leaves in female albino rats. J Ethnopharmacol 2015; 163: 135-41.
27. Pallab K. An Overview on Mangifera Indica Importance and Its Various Pharmacological Action. PharmaTutor 2014; 2(12): 72-6.
28. Beltrán AE, Alvarez Y, Xavier FE, Hernanz R, Rodriguez J, et al. Vascular effects of the Mangifera indica L. extract (Vimang). Eur J Pharmacol 2004; 499(3): 297-305.
29. Ahmed A, Eltyeb I, Mohamed A. Pharmacological activities of Mangifera indica Fruit Seeds Methanolic Extract. Omdurman J Pharmaceutical Sci 2006; 1(2): 216-31.
30. Alkizim FO, Matheka D, Abdulrahman FK, Muriithi A. Inhibitory effect of Mangifera indica on gastrointestinal motility. J Med Chem Drug Disco 2012; 2(1): 9-16.
31. Agbonon A1, Eklu-Gadegbeku K, Aklikokou K, Essien K, Akpagana K, Gbeassor M. The effect of Mangifera indica stem bark and Pluchea ovalis roots on tracheal smooth muscle in vitro. Fitoterapia 2002; 73(7-8): 619-22.
32. Dehghan Shiebani M, Noureddini M. Effect of Aqueous Extract of Mangifera Indica Seed on the Basic Contractility, Frequency and Strength of Isolated Virgin Rat Uterine Smooth Muscle. CHJ. 2014; 8(2): 66-73.]
33. Sairam K, Hemalatha S, Kumar A, Srinivasan T, Ganesh J, Shankar M, et al. Evaluation of anti-diarrhoeal activity in seed extracts of Mangifera indica. J Ethnopharmacol 2003; 84(1): 11-5.
34. Maggio CD, Jennings SR, Robichaux JL, Stapor PC, Hyman JM. A modified Hai-Murphy model of uterine smooth muscle contraction. Bull Math Biol 2012; 74(1): 143-58.
35. Keskil Z, Bayram M, Ercan ZS, Türker RK. The contribution of nitric oxide and endothelins to angiotensin II. Evoked responses in the rat isolated uterus smooth muscle. Gen Pharmacol 1999; 33(4): 307-12.
36. Bausher LP, Gregory DS, Sears ML. Interaction between alpha 2- and beta 2-adrenergic receptors in rabbit ciliary processes. Curr Eye Res 1987; 6(3): 497-505.
37. after cervical ganglionectomy. Curr Eye Res 1991; 10(5): 399-407.
38. Ahangarpour A, Amirzargar A, Oroojan AA, Bakhtiyarizadeh H, Nikraftar O. The effect of Daucus carota aqueous extract on uterine contractions of non-pregnant rats. Daneshvar Med 2012; 19(3): 67-74. [in Persian]
39. Yektaparast-Movafegh K, Panahi N, Sadeghi Hashjin G. Antispasmodic effect of Ephedra major extract on adrenergic and calcium channels receptors in the rat uterus. J Comparative Pathol 2015; 12(1): 1569-75. [in Persian]
40. Cole NM, Carvalho JC, Erik-Soussi M, Ramachandran N, Balki M. In Vitro Comparative Effect of Carbetocin and Oxytocin in Pregnant Human Myometrium with and without Oxytocin Pretreatment. Anesthesiology 2016; 124(2): 378-86.
41. Gruber CW, O'Brien M. Uterotonic plants and their bioactive constituents. Planta Med 2011; 77(3): 207-20.
42. Kitazawa T, Hirama R, Masunaga K, Nakamura T, Asakawa K, Cao J, et al. Muscarinic receptor subtypes involved in carbachol-induced contraction of mouse uterine smooth muscle. Naunyn Schmiedebergs Arch Pharmacol 2008; 377(4-6): 503-13.
43. Abdalla FM, Maróstica E, Picarelli ZP, Abreu LC, Avellar MC, Porto CS. Effect of estrogen on muscarinic acetylcholine receptor expression in rat myometrium. Mol Cell Endocrinol 2004; 213(2): 139-48.
44. Kitazawa T, Hashiba K, Cao J, Unno T, Komori S, Yamada M, et al. Functional roles of muscarinic M2 and M3 receptors in mouse stomach motility:studies with muscarinic receptor knockout mice. Eur J Pharmacol 2007; 554(2-3): 212-22.
45. Yasuda K, Sumi G, Kanamori C, Nakajima T, Tsuzuki T, Cho H, et al. Effects of ovarian hormone treatment on the gene expression of muscarinic acetylcholine receptors in the ovariectomized rat myometrium. J Steroid Biochem Mol Biol 2014; 143: 81-9.
46. Agbonon A, Aklikokou K, Gbeassor M. Mangifera indica stem bark effect on the rat trachea contracted by acetylcholine and histamine. Pharm Biol 2005; 43(5): 475–9.
47. Alani B, Zare M, Noureddini M. Bronchodilatory and B-adrenergic effects of methanolic and aqueous extracts of Althaea root on isolated tracheobronchial smooth rat muscle. Adv Biomed Res 2015; 4: 78.
48. Al-Otaibi MA. The physiological mechanism of uterine contraction with emphasis on calcium ion. Calcium Signaling 2014; 1(2): 70-5.
49. Brainard AM, Korovkina VP, England SK. Potassium channels and uterine function. Semin Cell Dev Biol 2007; 18(3): 332-9.
ارسال پیام به نویسنده مسئول

ارسال نظر درباره این مقاله
نام کاربری یا پست الکترونیک شما:

CAPTCHA code


XML   English Abstract   Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

Noureddini M, Dehghan-Sheibani M, Alani B. Effect of aqueous extract of mango kernel (Mangifera Indica) on basal activity of virgin rat uterine smooth muscle: role of muscarinic receptors. Feyz. 2017; 21 (1) :19-27
URL: http://feyz.kaums.ac.ir/article-1-3276-fa.html

نورالدینی مهدی، دهقان شیبانی معصومه، علنی بهرنگ. اثر عصاره آبی هسته انبه (Mangifera indica) بر فعالیت پایه عضلات صاف رحم موش صحرایی بکر: نقش گیرنده های موسکارینی. دوماه نامه علمي ـ پژوهشي فيض. 1396; 21 (1) :19-27

URL: http://feyz.kaums.ac.ir/article-1-3276-fa.html



دوره 21، شماره 1 - ( دوماه نامه 1396 ) برگشت به فهرست نسخه ها
مجله علمی پژوهشی فیض ::: دانشگاه علوم پزشکی کاشان KAUMS Journal ( FEYZ )
Persian site map - English site map - Created in 0.05 seconds with 31 queries by YEKTAWEB 3729