[صفحه اصلی ]   [Archive] [ English ]  
:: صفحه اصلي :: درباره مجله :: شماره جاری :: تمام شماره‌ها :: جستجو :: ثبت نام :: ارسال مقاله :: تماس با ما ::
بخش‌های اصلی
صفحه اصلی::
اطلاعات نشریه::
بانک‌ها و نمایه‌ها::
آرشیو مجله و مقالات::
برای نویسندگان::
اخلاق در پژوهش::
برای داوران::
تسهیلات پایگاه::
تماس با ما::
هوش مصنوعی::
::
Basic and Clinical Biochemistry and Nutrition
..
DOAJ
..
CINAHL
..
EBSCO
..
IMEMR
..
ISC
..
جستجو در پایگاه

جستجوی پیشرفته
..
دریافت اطلاعات پایگاه
نشانی پست الکترونیک خود را برای دریافت اطلاعات و اخبار پایگاه، در کادر زیر وارد کنید.
..
enamad
..
:: ::
برگشت به فهرست مقالات برگشت به فهرست نسخه ها
مقایسه تاثیر شش هفته تمرین تناوبی شدید با و بدون محدودیت کالری بر بیان ژن‌های mTORc1 و MuRF-1 در عضله تند انقباض رت‌های نر سالمند
سارا غلامی ، مهتاب معظمی* ، سیدرضا عطارزاده حسینی ، سیدعلیرضا حسینی کاخک ، سمانه فراحتی
گروه فیزیولوژی ورزشی، دانشکده علوم ورزشی، دانشگاه فردوسی مشهد، مشهد، ایران ، moazami@um.ac.ir
چکیده:   (192 مشاهده)
زمینه و هدف: با افزایش امید به زندگی، جمعیت سالمندان رو به رشد است و تحلیل توده عضلانی یکی از مهم‌ترین تغییرات مرتبط با پیری محسوب می‌شود. این پژوهش با هدف تعیین تأثیر شش هفته تمرین تناوبی شدید (HIIT) با و بدون محدودیت کالری بر بیان ژن‌های mTORC1 و MuRF-1 در عضله تند‌انقباض رت‌های نر سالمند انجام شد.  
روش‌ها: در این مطالعه تجربی، 36 رت نر سالمند (سن: 26 ماه، میانگین وزن: 430 گرم) به‌صورت تصادفی به چهار گروه کنترل، تمرین تناوبی شدید، تمرین تناوبی شدید با محدودیت کالری، و محدودیت کالری تقسیم شدند. پروتکل تمرینی شامل چهار دوره دو دقیقه‌ای با شدت 80 درصد ظرفیت بیشینه دویدن و دوره‌های استراحت فعال سه دقیقه‌ای با شدت 50 درصد ظرفیت بیشینه بود که به‌تدریج افزایش یافت. در گروه‌های محدودیت کالری، ابتدا 30 درصد از غذای تخصیص‌یافته کسر شد و از هفته چهارم، با توجه به کاهش وزن، این مقدار به 20 درصد کاهش یافت. اندازه‌گیری قد، وزن و نمونه‌برداری از عضله دوقلو 24 ساعت پس از آخرین جلسه تمرینی و پس از 12 ساعت ناشتایی انجام شد. بیان ژن‌های mTORC1 و MuRF-1 با استفاده از روش Real-Time PCR ارزیابی شد.
یافته‌ها: بیان ژن mTORc1 در گروه تمرین تناوبی با شدت بالا به طور معناداری نسبت به گروه کنترل افزایش یافت (0/05>P)؛ در حالی که در گروه‌های محدودیت کالری و ترکیب تمرین تناوبی با محدودیت کالری، کاهش معنی‌داری نسبت به گروه کنترل مشاهده شد. بیان ژن MuRF-1 در گروه‌های تمرین تناوبی شدید، محدودیت کالری، و ترکیب این دو به‌طور معنی‌داری بالاتر از گروه کنترل بود (0/05>P).
نتیجه‌گیری: تمرین تناوبی شدید با و بدون محدودیت کالری می‌تواند الگوی بیان ژن‌های mTORC1 و MuRF-1 را در عضله دوقلوی رت‌های سالمند تغییر دهد. این تغییرات نشان‌دهنده تأثیر این مداخلات بر مسیرهای آنابولیک و کاتابولیک عضلانی است. برای پیشگیری از آتروفی عضلانی در سالمندی، توجه به شدت‌های مختلف تمرینی و رژیم‌های غذایی ضروری به‌نظر می‌رسد.
واژه‌های کلیدی: سالمندی، MuRF-1، mTORc1، تمرین تناوبی شدید، محدودیت کالری
     
نوع مطالعه: پژوهشي | موضوع مقاله: عمومى
دریافت: 1404/1/8 | ویرایش نهایی: 1404/5/21 | پذیرش: 1404/4/25
فهرست منابع
1. Behrad H, Zareei M, Borjian Boroujeni Z, Asadi SS, Tabanejad Z, Panji M, et al. Sarcopenia and planning to management: review article. Tehran Univ Med J. 2021; 78(10):632-43.
2. Mahdiadeh M, Pourhaji F, Delshad MH, Dadashi Tonkaboni N, Pourhaji F. Investigating the effect of physical activity on improving sarcopenia in the elderly: a systematic review. Med J Mashhad Univ Med Sci. 2023; 66(1):48-64.
3. Gumucio JP, Mendias CL. Atrogin-1, MuRF-1, and sarcopenia. Endocrine. 2013; 43: 12-21. doi.10.1007/s12020-012-9751-7 PMid:22815045 PMCid:PMC3586538
4. Hoogaars WMH, Jaspers RT. Targeting myostatin and related pathways to counteract muscle atrophy. Adv Exp Med Biol. 2018;1088:153-206. doi.10.1007/978-981-13-1435-3_8 PMid:30390252
5. Egerman MA, Glass DJ. Signaling pathways controlling skeletal muscle mass. Crit Rev Biochem Mol Biol. 2014; 49(1):59-68. doi.10.3109/10409238.2013.857291 PMid:24237131 PMCid:PMC3913083
6. Wehling M, Cai B, Tidball JG. Modulation of myostatin expression during modified muscle use. FASEB J. 2000; 14: 103-10. doi.10.1096/fasebj.14.1.103 PMid:10627285
7. Laplante M, Sabatini DM. mTOR signaling in growth control and disease. Cell. 2012;149(2):274-93. doi.10.1016/j.cell.2012.03.017 PMid:22500797 PMCid:PMC3331679
8. Patursky-Polischuk I, Kasir J, Miloslavski R, Hayouka Z, Hausner-Hanochi M, Stolovich-Rain M, et al. Role of TSC, mTORC1 and microRNAs in amino acid-mediated control of TOP mRNAs. PLoS One. 2014; 9(10): e109410. doi.10.1371/journal.pone.0109410 PMid:25338081 PMCid:PMC4206288
9. Menon S, Dibble CC, Talbott G, Hoxhaj G, Valvezan AJ, Takahashi H, et al. Spatial control of the TSC complex integrates insulin and nutrient regulation. Cell. 2014; 156(4):771-85. doi.10.1016/j.cell.2013.11.049 PMid:24529379 PMCid:PMC4030681
10. Schiaffino S, Mammucari C. Regulation of skeletal muscle growth by the IGF1-Akt/PKB pathway. Skelet Muscle. 2011;1(1):4. doi.10.1186/2044-5040-1-4 PMid:21798082 PMCid:PMC3143906
11. Robertson RP. Chronic oxidative stress and glucose toxicity in beta cells. J Biol Chem. 2004;279(41):42351-4. doi.10.1074/jbc.R400019200 PMid:15258147
12. Stenkula KG, Said L, Karlsson M, Thorn H, Kjølhede P, Gustavsson J, et al. Mutant IRS inhibits insulin signaling in human adipocytes. Mol Cell Endocrinol. 2004; 221(1-2): 1-8. doi.10.1016/j.mce.2004.04.011 PMid:15223127
13. Chung HY, Lee EK, Choi YJ, Kim JM, Kim DH, Zou Y, et al. Molecular inflammation in aging and age-related diseases. J Dent Res. 2011; 90(7):830-40. doi.10.1177/0022034510387794 PMid:21447699
14. López-Lluch G, Navas P. Calorie restriction as an intervention in ageing. J Physiol. 2016; 594(8): 2043-60. doi.10.1113/JP270543 PMid:26607973 PMCid:PMC4834802
15. Chen CN, Liao YH, Tsai SC, Thompson LV. Caloric restriction and mTOR/ubiquitin pathways in skeletal muscle. Geroscience. 2019;41(6):871-80. doi.10.1007/s11357-019-00109-8 PMid:31676964 PMCid:PMC6925080
16. Blagosklonny MV. Calorie restriction: decelerating mTOR-driven aging. Cell Cycle. 2010; 9(4): 683-8. doi.10.4161/cc.9.4.10766 PMid:20139716
17. Drummond MJ, Dreyer HC, Fry CS, Glynn EL, Rasmussen BB. Skeletal muscle protein synthesis and mTORC1 signaling. J Appl Physiol (1985). 2009;106(4):1374-84. doi.10.1152/japplphysiol.91397.2008 PMid:19150856 PMCid:PMC2698645
18. Goto S. Biological mechanisms of aging: a critical overview. Aging Mech. 2015:3-27. doi.10.1007/978-4-431-55763-0_1
19. Kazemi A, Barbat S. High-intensity interval training and gene expression in aged mice. J Sport Biosci. 2019; 11(2):225-37.
20. Xiao M, Zhang Y, Xu X. CR and HIIT promote browning via PPARγ/PGC-1α/UCP1. Altern Ther Health Med. 2023; 29(3):134-9.
21. Alimoradi A, Mateen-Homaie H, Rahmati S. HIIT and caloric restriction affect inflammation in diabetic rats. Feyz Med Sci J. 2022; 26(4):416-23.
22. Mattox TA, Young ME, Rubel CE, Spaniel C, Rodríguez JE, Grevengoed TJ, et al. MuRF1 regulates ROS production in mitochondria. J Bioenerg Biomembr. 2014; 46:173-87. doi.10.1007/s10863-014-9549-9 PMid:24733503 PMCid:PMC4047114
23. Faezi G, Sherafati Moghadam M, Shadmehri S, Fathalipour M. HIIT and mTORC1 pathways in diabetic rats. Med Sci. 2020; 30(2):120-7. doi.10.29252/iau.30.2.120
24. Shirai T, Hanakita H, Uemichi K, Takemasa T. Order of concurrent training affects mTOR and metabolism. Physiol Rep. 2021; 9(5):e14770. doi.10.14814/phy2.14770
25. Sheibani S, Daryanoosh F, Tanideh N, Rahimi M, Jamhiri I, Refahiat MA. HIIT and detraining impact AKT/FoxO3a gene expression. Ebnesina. 2020; 22(2):15-23.
26. Cui X, Zhang Y, Wang Z, Yu J, Kong Z, Ružić L. HIIT alters mTOR and autophagy proteins in rats. Exp Physiol. 2019; 104(10):1505-17. doi.10.1113/EP087601 PMid:31357248
27. Swann J, Salimrouhi E. Fasting and exercise: effects on adaptation and recovery. Basic Clin Biochem Nutr. 2025; 1(2): 56-65.
28. Fontana L, Weiss EP, Villareal DT, Klein S, Holloszy JO. Long-term CR or PR alters IGF-1 and IGFBP-3. Aging Cell. 2008; 7(5): 681-7. doi.10.1111/j.1474-9726.2008.00417.x PMid:18843793 PMCid:PMC2673798
29. Glass DJ. Skeletal muscle hypertrophy and atrophy signaling. Int J Biochem Cell Biol. 2005; 37(10):1974-84. doi.10.1016/j.biocel.2005.04.018 PMid:16087388
30. Sherafati Moghadam M, Salesi M, Daryanoosh F, Hemati Nafar M, Fallahi A. HIIT alters AKT1, mTOR, P70S6K1 and 4E-BP1 in diabetic rats. JRUMS. 2018; 17(9):843-54.
31. Inoki K, Zhu T, Guan KL. TSC2 mediates cellular energy response. Cell. 2003; 115(5):577-90. doi.10.1016/S0092-8674(03)00929-2 PMid:14651849
32. Schiaffino S, Mammucari C. Regulation of skeletal muscle growth via IGF1-Akt/PKB. Skelet Muscle. 2011; 1(1): 4. doi.10.1186/2044-5040-1-4 PMid:21798082 PMCid:PMC3143906
33. Crino PB, Nathanson KL, Henske EP. The tuberous sclerosis complex. N Engl J Med. 2006; 355(13):1345-56. doi.10.1056/NEJMra055323 PMid:17005952
34. Horwath O, Cornet L, Strömlind H, Moberg M, Edman S, Söderlund K, et al. Reduced glycogen attenuates mTORC1 and autophagy signaling. Skelet Muscle. 2025; 15(1):9. doi.10.1186/s13395-025-00377-3 PMid:40128889 PMCid:PMC11934587
35. Rejeki PS, Pranoto A, Widiatmaja DM, Utami DM, Izzatunnisa N, Sugiharto L, et al. Aerobic exercise + IF reduces mTOR and Bcl-2 in obese females. Sports. 2024; 12(5):116. doi.10.3390/sports12050116 PMid:38786985 PMCid:PMC11126026
36. Wang Z, Liu W, Gu Y, Kim JC, Park Y, Kim SH. IF and endurance exercise affect musculoskeletal growth in rats. Nutr Res Pract. 2025; 19: e26.
ارسال پیام به نویسنده مسئول

ارسال نظر درباره این مقاله
نام کاربری یا پست الکترونیک شما:

CAPTCHA


XML   English Abstract   Print



Creative Commons License
This open access journal is licensed under a Creative Commons Attribution-NonCommercial ۴.۰ International License. CC BY-NC ۴. Design and publishing by Kashan University of Medical Sciences.
Copyright ۲۰۲۳© Feyz Medical Sciences Journal. All rights reserved.
برگشت به فهرست مقالات برگشت به فهرست نسخه ها
مجله علوم پزشکی فیض Feyz Medical Sciences Journal
Persian site map - English site map - Created in 0.04 seconds with 46 queries by YEKTAWEB 4714