[صفحه اصلی ]   [Archive] [ English ]  
:: صفحه اصلي :: درباره مجله :: شماره جاری :: تمام شماره‌ها :: جستجو :: ثبت نام :: ارسال مقاله :: تماس با ما ::
بخش‌های اصلی
صفحه اصلی::
اطلاعات نشریه::
بانک‌ها و نمایه‌ها::
آرشیو مجله و مقالات::
برای نویسندگان::
اخلاق در پژوهش::
برای داوران::
تسهیلات پایگاه::
تماس با ما::
::
Basic and Clinical Biochemistry and Nutrition
..
DOAJ
..
CINAHL
..
EBSCO
..
IMEMR
..
ISC
..
جستجو در پایگاه

جستجوی پیشرفته
..
دریافت اطلاعات پایگاه
نشانی پست الکترونیک خود را برای دریافت اطلاعات و اخبار پایگاه، در کادر زیر وارد کنید.
..
enamad
..
:: دوره 28، شماره 4 - ( دوماه نامه 1403 ) ::
جلد 28 شماره 4 صفحات 352-344 برگشت به فهرست نسخه ها
ارزیابی چرخه فحلی پس از پیوند بافت تخمدان انجماد شیشه‌ای در موش
تقی تکتاز هفشجانی ، فریگل جانقربانی ، مریم اخوان طاهری*
مرکز تحقیقات تولید سلول های جنسی، دانشگاه علوم پزشکی کاشان، کاشان، ایران ، maryam.akhavantaheri@yahoo.com
چکیده:   (160 مشاهده)
زمینه و هدف: بررسی سیتولوژی واژینال یکی از بهترین روش­ها جهت ارزیابی فعالیت محور هیپوتالاموس- هیپوفیز- تخمدان در جوندگان است. در این مطالعه به ­منظور بررسی بازگشت عملکرد تخمدان پس از انجماد و پیوند بافت تخمدان، به بررسی روزانه اسمیر واژن پرداختیم.
روش‌ها: در این پژوهش تجربی، از 20 موش سوری ماده بالغ (8 هفته ­ای) استفاده شد. موش­ های دارای چرخه فحلی منظم به طور تصادفی به 4 گروه تقسیم شدند: گروه کنترل، اوارکتومی، پیوند تخمدان انجمادی (VT) و پیوند تخمدان غیرانجمادی (FT). در همه گروه ­ها به جز گروه کنترل، موش­ ها اوارکتومی شدند. در گروه VT تخمدان­ راست پس از انجماد و ذوب در عضله همان موش پیوند شد. در گروه FT تخمدان راست بدون انجماد در عضله همان موش پیوند شد. از روز 4 پس از پیوند تا پایان دومین چرخه فحلی به ­طور روزانه اسمیر واژن تهیه شد. مشاهده اولین پرواستروس در هر موش به معنی شروع چرخه فحلی و فاصله دو پرواستروس متوالی به عنوان یک سیکل کامل در نظر گرفته شد.
یافته‌ها: در هر دو گروه پیوند انجمادی و غیرانجمادی، همه پیوندها کاملا موفقیت آمیز بود. میانگین شروع اولین و دومین چرخه فحلی در موش های گروه VT نسبت به گروه FT و کنترل به ­طور معناداری به تاخیر افتاد (0/05>P). طول چرخه فحلی در موش های گروه VT نسبت به سایر گروه ­ها افزایش داشت هرچند این افزایش معنادار نبود.
نتیجه‌گیری: طبق یافته­ های حاضر در موش ها، بازگشت مجدد چرخه فحلی پس از انجماد و پیوند بافت تخمدان اتفاق افتاد. این چرخه در ابتدا طولانی اما با گذشت زمان بهبود یافت. بنابراین ارزیابی روزانه چرخه فحلی می تواند روند ترمیم و بازیابی عملکرد بافت تخمدان پیوندی را بدون خارج کردن بافت از بدن موش­ ها نشان دهد.
واژه‌های کلیدی: چرخه فحلی، تخمدان، انجماد شیشه ای، پیوند بافت تخمدان
متن کامل [PDF 531 kb]   (111 دریافت)    
نوع مطالعه: پژوهشي | موضوع مقاله: medicine, paraclinic
دریافت: 1403/5/23 | ویرایش نهایی: 1403/8/2 | پذیرش: 1403/7/30 | انتشار: 1403/8/2
فهرست منابع
1. Tiong V, Rozita AM, Taib NA, Yip CH, Ng CH. Incidence of chemotherapy-induced ovarian failure in premenopausal women undergoing chemotherapy for breast cancer.World J. Surg 2014; 38: 2288-96. doi:10.1007/s00268-014-2542-y
2. Rodriguez-Wallberg KA, Oktay K. Options on fertility preservation in female cancer patients. Cancer Treat Rev. 2012; 38(5): 354-61. doi:10.1016/j.ctrv.2011.10.002
3. Seli E, Tangir J. Fertility preservation options for female patients with malignancies. Curr Opin Obstet Gyn. 2005; 17(3): 299-308. doi:10.1097/01.gco.0000169108.15623.34
4. Klocke S, Bündgen N, Köster F, Eichenlaub-Ritter U, Griesinger G. Slow-freezing versus vitrification for human ovarian tissue cryopreservation. Arch Gynecol Obstet. 2015; 291: 419-26. doi:10.1007/s00404-014-3390-6
5. Gandolfi F, Paffoni A, Brambilla EP, Bonetti S, Brevini TA, Ragni G. Efficiency of equilibrium cooling and vitrification procedures for the cryopreservation of ovarian tissue: comparative analysis between human and animal models. Fertil Steril. 2006; 85: 1150-6. doi:10.1016/j.fertnstert.2005.08.062
6. Demeestere I, Simon P, Emiliani S, Delbaere A, Englert Y. Orthotopic and heterotopic ovarian tissue transplantation. Hum Reprod Update. 2009; 15(6): 649-65. doi:10.1093/humupd/dmp021
7. Shikanov A, Zhang Z, Xu M, Smith RM, Rajan A, Woodruff TK, et al. Fibrin encapsulation and vascular endothelial growth factor delivery promotes ovarian graft survival in mice. Tissue Eng Part A. 2011; 17(23-24): 3095-104. doi:10.1089/ten.tea.2011.0204
8. Auta T, Hassan AT. Alteration in oestrus cycle and implantation in Mus musculus administered aqueous wood ash extract of Azadirachta indica (neem). Asian Pac J Reprod. 2016; 5(3): 188-92. doi:10.1016/j.apjr.2016.03.003
9. Ajayi AF, Akhigbe RE. Staging of the estrous cycle and induction of estrus in experimental rodents: an update. Fertil Res Pract. 2020; 6: 1-5. doi:10.1186/s40738-020-00074-3
10. Akhavan-Taheri M, Rezazadeh Valojerdi M, Ebrahimi B. The effect of vitrified ovarian tissue autotransplantation encapsulated with hyaluronic acid hydrogen on VEGF, CD31 and CD34 gene expression in rat: Feyz Med Sci J. 2021; 25(1): 724-31.
11. Mehdinia Z, Ashrafi M, Fathi R, Taheri P, Valojerdi MR. Restoration of estrous cycles by co-transplantation of mouse ovarian tissue with MSCs. Cell Tissue Res. 2020; 381: 509-25. doi:10.1007/s00441-020-03204-x
12. Tavana S, Valojerdi MR, Azarnia M, Shahverdi A. Restoration of ovarian tissue function and estrous cycle in rat after autotransplantation using hyaluronic acid hydrogel scaffold containing VEGF and bFGF. Growth Factors J. 2016; 34(3-4): 97-106. doi:10.1080/08977194.2016.1194835
13. Champlin AK, Dorr DL, Gates AH. Determining the stage of the estrous cycle in the mouse by the appearance of the vagina. Biol Reprod. 1973; 8(4): 491-4. doi:10.1093/biolreprod/8.4.491
14. Byers SL, Wiles MV, Dunn SL, Taft RA. Mouse estrous cycle identification tool and images. PLoS One 2012; 7(4): e35538. doi:10.1371/journal.pone.0035538
15. Singh R, Ali A, Jeyabalan G, Semwal A. An overview of the current methodologies used for evaluation of aphrodisiac agents. J Acute Dis 2013; 2(2): 85-91. doi:10.1016/S2221-6189(13)60105-5
16. Sahoo HB, Nandy S, Senapati AK, Sarangi SP, Sahoo SK. Aphrodisiac activity of polyherbal formulation in experimental models on male rats. Pharmacogn Mag. 2014; 6(2):120. doi:10.4103/0974-8490.129029
17. McLean AC, Valenzuela N, Fai S, Bennett SA. Performing vaginal lavage, crystal violet staining, and vaginal cytological evaluation for mouse estrous cycle staging identification. JoVE. 2012; 15(67): e4389. doi:10.3791/4389
18. Santos RR, Amorim C, Cecconi S, Fassbender M, Imhof M, Lornage J, et al. Cryopreservation of ovarian tissue: an emerging technology for female germline preservation of endangered species and breeds. Anim Reprod Sci. 2010; 122(3-4): 151-63. doi:10.1016/j.anireprosci.2010.08.010
19. Amorim CA, Curaba M, Van Langendonckt A, Dolmans MM, Donnez J. Vitrification as an alternative means of cryopreserving ovarian tissue. Reprod Biomed Online. 2011; 23(2): 160-86. doi:10.1016/j.rbmo.2011.04.005
20. Dath C, Van Eyck AS, Dolmans MM, Romeu L, Delle Vigne L, Donnez J, et al. Xenotransplantation of human ovarian tissue to nude mice: comparison between four grafting sites. Hum Reprod. 2010; 25(7): 1734-43. doi:10.1093/humrep/deq131
21. Soleimani R, Van der Elst J, Heytens E, Van den Broecke R, Gerris J, Dhont M, et al. Back muscle as a promising site for ovarian tissue transplantation, an animal model. Hum Reprod. 2008; 23(3): 619-26. doi:10.1093/humrep/dem405
22. Deng X, Zheng H, Yu X, Yu H, Zhang C, Chao L, et al. Cryopreserved ovarian tissues can maintain a long-term function after heterotopic autotransplantation in rat. Reprod. 2009; 138(3): 519. doi:10.1530/REP-09-0151
23. Mueller A, Maltaris T, Dimmler A, Hoffmann I, Beckmann MW, Dittrich R. Development of sex cord stromal tumors after heterotopic transplantation of cryopreserved ovarian tissue in rats. Anticancer Res. 2005; 25(6B): 4107-11. PMID: 16309204.
24. Abedi GR, Sotoudeh A, Bazzazan A, Ganjai A. Experimental ovarian transplantation on stomach for bone repair in ovariohysterectomized rabbits. Acta Cir Bras. 2013; 28: 412-8. doi:10.1590/S0102-86502013000600002
25. Laufer MR, Upton J, Schuster SR, Grier H, Emans SJ, Diller L. Ovarian tissue autologous transplantation to the upper extremity for girls receiving abdominal/pelvic radiation: 20-year follow-up of reproductive endocrine function. J. Pediatr. Adolesc. Gynecol 2010; 23(2): 107-10. doi:10.1016/j.jpag.2009.09.005
26. Yang HY, Cox SL, Jenkin G, Findlay J, Trounson A, Shaw J. Graft site and gonadotrophin stimulation influences the number and quality of oocytes from murine ovarian tissue grafts. Reprod. 2006; 131(5): 851-9. doi:10.1530/rep.1.00916
27. Khalili MA, Dehghan M, Nazari S, Agha-Rahimi A. Assessment of ovarian tissues autografted to various body sites followed by IVM in mouse. Iran J Reprod Med. 2014; 12(3): 199. PMID: 24799880.
28. Lee JR, Youm HW, Kim SK, Jee BC, Suh CS, Kim SH. Effect of necrostatin on mouse ovarian cryopreservation and transplantation. Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol. 2014; 178: 16-20. doi:10.1016/j.ejogrb.2014.04.040
29. Tafti D, Fathi R, Tahaei LS, Fatehi R, Ebrahimi B, Khodaverdi S, et al. Vitrified xenograft survived human ovarian follicles using erythropoietin. J Gynecol. Obstetrics Forecast 2018; 1(1): 1-3.
30. Goldman JM, Murr AS, Cooper RL. The rodent estrous cycle: characterization of vaginal cytology and its utility in toxicological studies. Birth Defects Res. B Dev Reprod Toxicol 2007; 80(2): 84-97. doi:10.1002/bdrb.20106
31. Damous LL, Silva SM, Lopes RA, Sakano CR, Simões MD, Montero EF. Study on the vaginal smear of rats submitted to autologous ovarian transplant: impact of remote ischemic preconditioning. Acta Cir Bras. 2009; 24: 387-92. doi:10.1590/S0102-86502009000500009
32. Schnorr J, Oehninger S, Toner J, Hsiu J, Lanzendorf S, Williams R, et al. Functional studies of subcutaneous ovarian transplants in non-human primates: steroidogenesis, endometrial development, ovulation, menstrual patterns and gamete morphology. Hum Reprod. 2002; 17(3): 612-9. doi:10.1093/humrep/17.3.612
33. Westwood FR. The female rat reproductive cycle: a practical histological guide to staging. Toxicol Pathol. 2008; 36(3): 375-84. doi:10.1177/0192623308315665
34. Marano JE, Sun D, Zama AM, Young W, Uzumcu M. Orthotopic transplantation of neonatal GFP rat ovary as experimental model to study ovarian development and toxicology. Reprod Toxicol. 2008; 26(3-4): 191-6. doi:10.1016/j.reprotox.2008.09.001
35. Damous LL, Nakamuta JS, Soares-Jr JM, Maciel GA, Simoes RD, Montero EF, et al. Females transplanted with ovaries subjected to hypoxic preconditioning show impair of ovarian function. J. Ovarian Res 2014; 7:1-7. doi:10.1186/1757-2215-7-34
36. Mayer LP, Pearsall NA, Christian PJ, Devine PJ, Payne CM, McCuskey MK, et al. Long-term effects of ovarian follicular depletion in rats by 4-vinylcyclohexene diepoxide. Reprod. Toxicol 2002; 16(6): 775-81. doi:10.1016/S0890-6238(02)00048-5
37. Kao SW, Sipes IG, Hoyer PB. Early effects of ovotoxicity induced by 4-vinylcyclohexene diepoxide in rats and mice. Reproductive Toxicology 1999; 13(1): 67-75. doi:10.1016/S0890-6238(98)00061-6
38. Reynolds LP, Grazul‐Bilska AT, Redmer DA. Angiogenesis in the female reproductive organs: pathological implications. INT J EXP PATHOL 2002; 83(4):151-64. doi:10.1046/j.1365-2613.2002.00277.x 39. Alem FA, Pridanic M. Transvaginal color Doppler determination of uterine blood flow characteristics in PCOD. Fertil Steril 1996; 6: 515-6. doi:10.1016/S0015-0282(16)58145-X
39. Alem FA, Pridanic M. Transvaginal color Doppler determination of uterine blood flow characteristics in PCOD. Fertil Steril 1996; 6: 515-6. doi:10.1016/S0015-0282(16)58145-X
40. Kamat BR, Brown LF, Manseau EJ, Senger DR, Dvorak HF. Expression of vascular permeability factor/vascular endothelial growth factor by human granulosa and theca lutein cells. Role in corpus luteum development. Am J Pathol 1995; 146(1):157. PMID: 7531945.
ارسال پیام به نویسنده مسئول

ارسال نظر درباره این مقاله
نام کاربری یا پست الکترونیک شما:

CAPTCHA



XML   English Abstract   Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

Taktaz-Hafshejani T, Janghorbani F, Akhavan Taheri M. Evaluation of estrous cycle after transplantation of vitrified ovarian tissue in mice. Feyz Med Sci J 2024; 28 (4) :344-352
URL: http://feyz.kaums.ac.ir/article-1-5220-fa.html

تکتاز هفشجانی تقی، جانقربانی فریگل، اخوان طاهری مریم. ارزیابی چرخه فحلی پس از پیوند بافت تخمدان انجماد شیشه‌ای در موش. مجله علوم پزشکی فيض. 1403; 28 (4) :344-352

URL: http://feyz.kaums.ac.ir/article-1-5220-fa.html



Creative Commons License
This open access journal is licensed under a Creative Commons Attribution-NonCommercial ۴.۰ International License. CC BY-NC ۴. Design and publishing by Kashan University of Medical Sciences.
Copyright ۲۰۲۳© Feyz Medical Sciences Journal. All rights reserved.
دوره 28، شماره 4 - ( دوماه نامه 1403 ) برگشت به فهرست نسخه ها
مجله علوم پزشکی فیض Feyz Medical Sciences Journal
Persian site map - English site map - Created in 0.05 seconds with 46 queries by YEKTAWEB 4660