[صفحه اصلی ]   [Archive] [ English ]  
:: صفحه اصلي :: درباره مجله :: شماره جاری :: تمام شماره‌ها :: جستجو :: ثبت نام :: ارسال مقاله :: تماس با ما ::
بخش‌های اصلی
صفحه اصلی::
اطلاعات نشریه::
بانک‌ها و نمایه‌ها::
آرشیو مجله و مقالات::
برای نویسندگان::
اخلاق در پژوهش::
برای داوران::
تسهیلات پایگاه::
تماس با ما::
::
Basic and Clinical Biochemistry and Nutrition
..
DOAJ
..
CINAHL
..
EBSCO
..
IMEMR
..
ISC
..
جستجو در پایگاه

جستجوی پیشرفته
..
دریافت اطلاعات پایگاه
نشانی پست الکترونیک خود را برای دریافت اطلاعات و اخبار پایگاه، در کادر زیر وارد کنید.
..
enamad
..
:: دوره 24، شماره 3 - ( دوماه نامه 1399 ) ::
جلد 24 شماره 3 صفحات 281-270 برگشت به فهرست نسخه ها
تأثیرات ترهالوز و رزوراترول بر پارامترهای سلول اسپرم پس از فرآیند انجماد
حسن حسنی بافرانی ، حامد حداد کاشانی* ، فاطمه شابه پور
مرکز تحقیقات علوم تشریح، پژوهشکده علوم پایه، دانشگاه علوم پزشکی کاشان، ایران ، hamedir2010@gmail.com
چکیده:   (2013 مشاهده)
سابقه و هدف: انجماد نمونه منی انسان به‌عنوان یک روش مؤثر در تکنیک‌های کمک‌باروری (ART) محسوب می‌شود. در طی روند انجماد، سلول‌های اسپرم در معرض استرس‌های فیزیکی و شیمیایی قرار می‌گیرند و در نتیجه آسیب به آکسونم، افزایش نقایص مورفولوژیکی قطعه میانی و کاهش تحرک اسپرم ایجاد می‌گردد. به این ترتیب در این مطالعه، تأثیرات آنتی‌اکسیدان‌های ترهالوز و رزوراترول بر پارامترهای اسپرم در طی فرآیندهای انجماد و ذوب مورد ارزیابی قرار می‌گیرد.
مواد و روش‌ها: مطالعه مقطعی بر روی 40 نمونه طبیعی مایع منی که در 7 گروه تقسیم شده بودند، انجام گرفت. اثرات آنتی‌اکسیدان‌های مذکور بر پارامترهای اسپرم با روش‌های آنالیز کامپیوتری (CASA) و ارزیابی کروماتین اسپرم (SCD) بررسی گردید. لازم به ذکر است0/05 P<از نظر آماری معنی‌دار در نظر گرفته شد.
نتایج: گروه 3 (تیمار محیط انجمادی و شستشو با ترهالوز 100 میلی مولار)، بیشترین درصد تحرک، سالم بودن غشای آکروزوم و بی‌نقص بودن غشای پلاسمایی را در مقایسه با گروه کنترل نشان داد و پس از ذوب نیز دارای DNA سالم بیشتری بود و کمتر بقای اسپرم را دچار مشکل می‌کرد.
نتیجه‌گیری: با توجه به نتایج می‌توان بیان داشت که به‌طور کلی نمونه‌های دارای ترهالوز میزان کیفیت سیمن را بهبود می‌بخشند و حتی بعد از ذوب هم در حفظ تحرک اسپرم نقش دارند. رزوراترول هم در غلظت‌های پایین اثرات مفیدی روی بقای اسپرم دارد و به‌عنوان آنتی‌اکسیدانی قوی، ROS را مهار می‌کند.
واژه‌های کلیدی: انجماد، اسپرم، آنتی‌اکسیدان، ترهالوز، رزوراترول
متن کامل [PDF 1220 kb]   (879 دریافت)    
نوع مطالعه: پژوهشي | موضوع مقاله: medicine, paraclinic
دریافت: 1398/9/3 | ویرایش نهایی: 1399/6/19 | پذیرش: 1398/12/3 | انتشار: 1399/5/29
فهرست منابع
1. Aitken RJ. Reactive oxygen species as mediators of sperm capacitation and pathological damage. Mol Reprod Dev 2017; 84(10): 1039-52.
2. Brotherton J, Cryopreservation of human semen Arch Androl 1990; 25(2): 181-59.
3. Vaz CR, Lamim T, Salvador RA, Batschauer APB, L Amaral VL, Til D. Could cryopreserved human semen samples be stored at-80°C? JBRA Assist Reprod 2018; 22(2): 108.
4. Aitken J, Fisher H. Reactive oxygen species generation and human spermatozoa: the balance of benefit and risk. Bioessays 1994; 16(4): 259-67.
5. Alvarez JG, Touchstone JC, Blasco L, Storey BT, Spontaneous lipid peroxidation and production of hydrogen peroxide and superoxide in human spermatozoa. Superoxide dismutase as major enzyme protectant against oxygen toxicity. J Androl 1987; 8(5): 338-48.
6. De Iuliis, GN, Wingate JK, Koppers AJ, McLaughlin EA, Aitken RJ. Definitive evidence for the nonmitochondrial production of superoxide anion by human spermatozoa. J Clin Endocrinol Metab 2006; 91(5): 1968-75.
7. Sharma RK, Agarwal A, Role of reactive oxygen species in male infertility. Urology 1996; 48(6): 835-50.
8. van Overveld FW, Haenen GR, Rhemrev J, Vermeiden JP, Bast A. Tyrosine as important contributor to the antioxidant capacity of seminal plasma. Chem Biol Interact 2000; 127(2): 151-61.
9. Miller JK, Brzezinska-Slebodzinska, E, Madsen FC, Oxidative stress, antioxidants, and animal function. J Dairy Sci 1993; 76(9): 2812-23.
10. Yoshimoto T, Nakamura S, Yamauchi Sh, Muto N, Nakada T, Ashizawa K, et al. Improvement of the post-thaw qualities of Okinawan native pig spermatozoa frozen in an extender supplemented with ascorbic acid 2-O-alpha-glucoside. Cryobiology 2008; 57(1): 30-6.
11. Agarwal A, Nallella KP, Allamaneni SSR, Said TM, Role of antioxidants in treatment of male infertility: an overview of the literature. Reprod Biomed Online 2004; 8(6): 616-27.
12. Bathgate R, Eriksson BM, Thomson PC, Maxwell WMC, Evans G. Field fertility of frozen-thawed boar sperm at low doses using non-surgical, deep uterine insemination. Anim Reprod Sci 2008; 103(3-4): 323-35.
13. Belzile JP, Sabalza M, Craig M, Clark E, Morello CS, Spector DH. Trehalose, an mTOR-independent inducer of autophagy, inhibits human cytomegalovirus infection in multiple cell types. J VIROL 2016; 90(3): 1259-77.
14. Melzer ES, Sein CE, Chambers JJ, Siegrist MS. DivIVA concentrates mycobacterial cell envelope assembly for initiation and stabilization of polar growth. Cytoskeleton 2018; 75(12): 498-507.
15. Lau UY, Trehalose Glycopolymers for Protein and Cell Stabilization. UCLA, ProQuest Dissertations Publishing 2016. 10027115
16. Cottart CH, Nivet‐Antoine V, Laguillier‐Morizot Ch, Beaudeux J-L, Resveratrol bioavailability and toxicity in humans. Mol Nutr Food Res 2010; 54(1): 7-16.
17. Li Z, Lin Q, Liu R, Xiao W, Liu W. Protective effects of ascorbate and catalase on human spermatozoa during cryopreservation. J. Androl, 2010; 31(5): 437-44.
18. Branco CS, Garcez ME, Pasqualotto FF, Erdtman B, Salvador M. Resveratrol and ascorbic acid prevent DNA damage induced by cryopreservation in human semen Cryobiology 2010; 60(2): 235-7.
19. Kalthur G, Raj S, Thiyagarajan A, Kumar S, Kumar P, Kumar Adiga S. Vitamin E supplementation in semen-freezing medium improves the motility and protects sperm from freeze-thaw-induced DNA damage. Fertil Steril 2011; 95(3): 1149-51.
20. Fatma BA, Nozha CF, Ines D, Hamadi A, Basma H, Leila AK, Sperm quality improvement after date seed oil in vitro supplementation in spontaneous and induced oxidative stress. Asian J Androl 2009; 11(3): 393-8.
21. Heidary M, Vahhabi S, Reza Nejadi J, Delfan B, Birjandi M, Kaviani H, et al. Effect of saffron on semen parameters of infertile men. Urol J 2008; 5(4): 255-9.
22. Rowe PJ, Comhaire FH, Hargreave TB, MahmoudAMA, WHO manual for the standardized investigation and diagnosis of the infertile male. 2000: Cambridge University Press.
23. Nicholson C, Abramsson L, Holm SE, Bjurulf E, Bacterial contamination and sperm recovery after semen preparation by density gradient centrifugation using silane-coated silica particles at different g forces. Hum Reprod 2000; 15(3): 662-6.
24. Sanocka D, Miesel R, Jedrzejczak P, Chełmonska-Soyta AC, Kurpisz M. Effect of reactive oxygen species and the activity of antioxidant systems on human semen; association with male infertility. Int J Androl 1997; 20(5): 255-64.
25. O'Connell M, McClure N, Lewis S. The effects of cryopreservation on sperm morphology, motility and mitochondrial function. Hum Reprod 2002; 17(3): 704-9.
26. Ball BA, Vo A, Detection of lipid peroxidation in equine spermatozoa based upon the lipophilic fluorescent dye C1l-BODIPY581/591. J Androl 2002; 23(2): 259-69.
27. Alvarez JG, Storey BT. Differential incorporation of fatty acids into and peroxidative loss of fatty acids from phospholipids of human spermatozoa. Mol Reprod Dev 1995; 42(3): 334-46.
28. Benchaib M, Braun V, Lornage J, Hadj S, Salle B, Lejeune H, et al. Sperm DNA fragmentation decreases the pregnancy rate in an assisted reproductive technique. Hum Reprod 2003; 18(5) : 1023-8.
29. Donnelly ET, McClure N, Lewis SE. Cryopreservation of human semen and prepared sperm: effects on motility parameters and DNA integrity. Fertil Steril 2001; 76(5): 892-900.
30. Gavrieli Y, Sherman Y, Ben-Sasson SA, Identification of programmed cell death in situ via specific labeling of nuclear DNA fragmentation. J Cell Biol 1992; 119(3): 493-501.
31. Baumber J, Ball BA, Gravance CG, Medina V, Davies-Morel MC. The effect of reactive oxygen species on equine sperm motility, viability, acrosomal integrity, mitochondrial membrane potential, and membrane lipid peroxidation. J Androl 2000; 21(6): 895-902.
32. Lass A, Akagbosu F, and Brinsden P, Sperm banking and assisted reproduction treatment for couples following cancer treatment of the male partner. Hum Reprod Update 2001; 7(4): 370-7.
33. Jiang MX, Zhu Y, Zhu ZY, Sun QY, Chen DY. Effects of cooling, cryopreservation and heating on sperm proteins, nuclear DNA, and fertilization capability in mouse. Mol Reprod Dev 2005; 72(1): 129-34.
34. Donnelly ET, Steele EK, McClure N, Lewis SEM. Assessment of DNA integrity and morphology of ejaculated spermatozoa from fertile and infertile men before and after cryopreservation. Hum Reprod 2001; 16(6): 1191-9.
35. Zini A, Fischer M A, Mak V, Phang D, Jarvi K. Catalase-like and superoxide dismutase-like activities in human seminal plasma. Urological Research 2002; 30(5): 321-3.
36. Taylor K, Roberts P, Sanders K, Burton P. Effect of antioxidant supplementation of cryopreservation medium on post-thaw integrity of human spermatozoa. Reprod Biomed Online 2009; 18(2): 184-9.
37. Hammadeh M, Askari AS, Georg T, Rosenbaum P, Schmidt W. Effect of freeze-thawing procedure on chromatin stability, morphological alteration and membrane integrity of human spermatozoa in fertile and subfertile men. Int J Androl 1999; 22(3): 155-62.
38. Branco CS, Garcez ME, Pasqualotto FF, Erdtman B, Salvador M. Resveratrol and ascorbic acid prevent DNA damage induced by cryopreservation in human semen. Cryobiology 2010; 60(2): 235-7.
39. Garcez ME, dos Santos Branco C, Lara LV, Pasqualotto FF, Salvador M. Effects of resveratrol supplementation on cryopreservation medium of human semen. Fertil Steril 2010; 94(6): 2118-21.
40. Said TM, Gaglani A, Agarwal A. Implication of apoptosis in sperm cryoinjury. Reprod Biomed Online 2010; 21(4): 456-62.
41. Agarwal A, Ikemoto I, Loughlin K. Levels of reactive oxygen species before and after sperm preparation: comparison of swim-up and L4 filtration. Arch Androl 1994; 32: 169.
42. Holian O. Walter R. Resveratrol inhibits the proliferation of normal human keratinocytes in vitro. J Cell Biochem 2001; 81(S36): 55-62.
43. Matsumura A, Ghosh A, Pope GS, Darbre PD. Comparative study of oestrogenic properties of eight phytoestrogens in MCF7 human breast cancer cells. J Steroid Biochem Mol Biol 2005; 94(5): 431-43.
44. Zou J, Huang Y, Chen Q, Wang N, Cao K, Hsieh TC, et al. Suppression of mitogenesis and regulation of cell cycle traverse by resveratrol in cultured smooth muscle cells. Int J Oncol 1999; 15(4): 647-98.
45. Juan ME, González-Pons E, Munuera T, Ballester J, Rodríguez-Gil JE, Planas JM. trans-Resveratrol, a natural antioxidant from grapes, increases sperm output in healthy rats. J Nutr 2005; 135(4): 757-60.
46. Shin S, Jeon JH, Park D, Jang MJ, Choi JH, Choi BH, et al. trans-Resveratrol relaxes the corpus cavernosum ex vivo and enhances testosterone levels and sperm quality in vivo. Arch Pharm Res 2008; 31(1): 83-7.
47. Levenson AS, Gehm BD, Pearce ST, Horiguchi J, Simons LA, Ward III JE et al. Resveratrol acts as an estrogen receptor (ER) agonist in breast cancer cells stably transfected with ER α. Int J Cancer 2003; 104(5): 587-96.
48. Yang T, Wang Li, Meixiao Z, Lirong Z, Lianhe Y. Properties and molecular mechanisms of resveratrol: a review. Die Pharmazie-An Int J Pharm Pharm Sci 2015; 70(8): 501-6.
49. Chan MM, Mattiacci JA, Hwang HS, Shah A, Fong D. Synergy between ethanol and grape polyphenols, quercetin, and resveratrol, in the inhibition of the inducible nitric oxide synthase pathway. Biochem Pharmacol 2000; 60(10): 1539-48.
ارسال پیام به نویسنده مسئول

ارسال نظر درباره این مقاله
نام کاربری یا پست الکترونیک شما:

CAPTCHA


XML   English Abstract   Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

Hassani-Bafrani H, Haddad-Kashani H, Shabehpour F. Effects of trehalose and resveratrol on sperm cell parameters after cryopreservation. Feyz Med Sci J 2020; 24 (3) :270-281
URL: http://feyz.kaums.ac.ir/article-1-4022-fa.html

حسنی بافرانی حسن، حداد کاشانی حامد، شابه پور فاطمه. تأثیرات ترهالوز و رزوراترول بر پارامترهای سلول اسپرم پس از فرآیند انجماد. مجله علوم پزشکی فيض. 1399; 24 (3) :270-281

URL: http://feyz.kaums.ac.ir/article-1-4022-fa.html



Creative Commons License
This open access journal is licensed under a Creative Commons Attribution-NonCommercial ۴.۰ International License. CC BY-NC ۴. Design and publishing by Kashan University of Medical Sciences.
Copyright ۲۰۲۳© Feyz Medical Sciences Journal. All rights reserved.
دوره 24، شماره 3 - ( دوماه نامه 1399 ) برگشت به فهرست نسخه ها
مجله علوم پزشکی فیض Feyz Medical Sciences Journal
Persian site map - English site map - Created in 0.06 seconds with 46 queries by YEKTAWEB 4660