[صفحه اصلی ]   [Archive] [ English ]  
:: صفحه اصلي :: درباره نشريه :: آخرين شماره :: تمام شماره‌ها :: جستجو :: ثبت نام :: ارسال مقاله :: تماس با ما ::
:: دوره 23، شماره 5 - ( دوماه نامه 1398 ) ::
جلد 23 شماره 5 صفحات 467-475 برگشت به فهرست نسخه ها
تأثیر انکپسوله کردن تخمدان با هیدروژل آلژینات بر مورفولوژی و شمارش فولیکولی تخمدان انجماد شیشه ای شده موش
عاطفه شیرازی تهرانی ، طاهره مازوچی* ، مریم اخوان طاهری ، مژده صالح نیا
مرکز تحقیقات تولید سلول های جنسی، دانشگاه علوم پزشکی کاشان، کاشان، ایران ، mazoochi45@yahoo.com
چکیده:   (205 مشاهده)
سابقه و هدف: انجماد بافت تخمدان یکی از روش­ های حفظ باروری زنان مبتلا به سرطان و نارسایی زودرس تخمدان است. حفظ ذخایر فولیکولی پس از انجماد تخمدان، ضروری است. این مطالعه به منظور تعیین اثر غلظت­ های مختلف هیدروژل آلژینات به­ عنوان کپسول بر مورفولوژی و شمارش فولیکولی تخمدان انجماد شیشه ­ای­ شده موش انجام شد.
مواد و روش­ ها: در این مطالعه تجربی، تخمدان موش­ های­ بالغ به 4 گروه تقسیم شدند: تخمدان غیرانجمادی، تخمدان انجمادی، تخمدان‌هایی که در هیدروژل آلژینات با غلظت ­های 0/5 و 1 درصد انکپسوله و سپس منجمد شدند (به ­ترتیب، گروه آزمایشی 1 و 2). انجماد شیشه­ ای با محلول­ های اتیلن گلیکول و دی متیل سولفوکسید انجام شد. ارزیابی مورفولوژی بااستفاده از رنگ ­آمیزی هماتوکسیلین و ائوزین صورت گرفت و میانگین تعداد فولیکول­ های سالم و اترتیک در هر گروه ارزیابی شد. داده­ ها بااستفاده از آزمون آنالیز  one-way ANOVA و آزمون تعقیبی tukey مقایسه شدند. مقادیر 0/05<P به لحاظ آماری معنادار در نظر گرفته شد.
نتایج: میانگین تعداد کلّ فولیکول­ ها در همه گروه ­ها تفاوت معناداری نداشت. بیشترین و کمترین تعداد فولیکول­ های سالم به ­ترتیب در گروه غیرانجمادی و گروه آزمایشی 1 مشاهده شد (0/05<P). کاهش مشاهده­شده در میانگین کل، فولیکول­ های سالم در گروه ­های آزمایشی نسبت به گروه­ انجمادی معنادار نبود، ولی نسبت به گروه غیرانجمادی معنادار بود (0/05<P). میانگین تعداد فولیکول­ های اترتیک به­ صورت معناداری در گروه ­های انجمادی و آزمایشی نسبت به گروه غیرانجمادی افزایش پیدا کرد (0/05< P).
نتیجه­ گیری: انکپسوله‌کردن تخمدان با غلظت­ های 0/5 و 1 درصد هیدروژل آلژینات، نتوانست سبب بهبود مورفولوژی و حفظ بیشتر فولیکول­ های سالم تخمدان انجماد شیشه­ ای­ شده شود.
واژه‌های کلیدی: انجماد شیشه ای، هیدروژل آلژینات، تخمدان، موش
متن کامل [PDF 1719 kb]   (35 دریافت)    
نوع مطالعه: پژوهشي | موضوع مقاله: عمومى
دریافت: ۱۳۹۷/۱۱/۱۷ | پذیرش: ۱۳۹۸/۶/۴ | انتشار: ۱۳۹۸/۹/۲۵
فهرست منابع
1. Fathi R, Rezazadeh Valojerdi M, Salehnia M, Ebrahimi B, SalmanYazdi R. Ovarian Tissue Transplantation: Advantages, Disadvantages and Upcoming Challenges (A Review Article). J Mazandaran Univ Med Sci 2014; 24(113): 253-65. [in Persian]
2. Dittrich R, Maltaris T, Hoffmann I, Oppelt PG, Beckmann MW, Mueller A. Fertility preservation in cancer patients. Minerva Ginecol 2010; 62(1): 63-80.
3. Donnez J. Introduction: fertility preservation, from cancer to benign disease to social reasons: the challenge of the present decade. Fertil Steril 2013; 99(6): 1467-8.
4. Rezaie M, Fathi F, Seyyedoshohadaie F, RAH HR. Comparison of Cryopreservation of Bovine Ovarian Tissue: Slow and Rapid Cryopreservation. Iran J Obstet Gynecol Infertil 2012; 15(2):1-75.
5. Youm HW, Lee JR, Lee J, Jee BC, Suh CS, Kim SH. Optimal vitrification protocol for mouse ovarian tissue cryopreservation: effect of cryoprotective agents and in vitro culture on vitrified-warmed ovarian tissue survival. Hum Reprod 2014; 29(4): 720–30.
6. Choi J, Lee B, Lee E, Yoon BK, Bae D, Choi D. Cryopreservation of ovarian tissues temporarily suppresses the proliferation of granulosa cells in mouse preantral follicles. Cryobiology 2008; 56(1): 36-42.
7. Mazoochi T, Salehnia M, Valojerdi MR, Mowla SJ. Morphologic, ultrastructural, and biochemical identification of apoptosis in vitrified-warmed mouse ovarian tissue. Fertil Steril 2008; 90(4): 1480-6.
8. Lee D, Ouhibi N, Battaglia D. Cryopreservation of ovarian tissue: banking reproductive potential for the future. Curr Women's Health Rep 2001; 1(2): 152-6.
9. Keros V, Xella S, Hultenby K, Pettersson K, Sheikhi M, Volpe A, et al. Vitrification versus controlled-rate freezing in cryopreservation of human ovarian tissue. Hum Reprod 2009; 24(7): 1670-83.
10. Gandolfi F, Paffoni A, Brambilla EP, Bonetti S, Brevini TA, Ragni G. Efficiency of equilibrium cooling and vitrification procedures for the cryopreservation of ovarian tissue: comparative analysis between human and animal models. Fertil Steril 2006; 85: 1150-6.
11. Mazoochi T, Khamechian T, Ehteram M, Kashani HH. The effect of melatonin on expression of p53 and ovarian preantral follicle development isolated from vitrified ovary. Comp Clin Pathol 2018; 27(1): 83-8.
12. Posillico S, Kader A, Falcone T, Agarwal A. Ovarian tissue vitrification: Modalities, challenges and potentials. Curr Women's Health Rev 2010; 6(4): 352-66.
13. Huang H, Choi JK, Rao W, Zhao S, Agarwal P, Zhao G, et al. Alginate hydrogel microencapsulation inhibits devitrification and enables large‐volume low‐CPA cell vitrification. Adv Funct Mater 2015; 25(44): 6839-50.
14. Abdi S, Salehnia M, Hosseinkhani S. Comparison of Survival and Developmental rates of Mouse Ovarian Follicles after Two and Three Dimensional Cultures. J Adv Biomed Pathobio Res 2013; 16(2): 51-63. [in Persian]
15. Brito IR, Lima IM, Xu M, Shea LD, Woodruff TK, Figueiredo JR. Three-dimensional systems for in vitro follicular culture: overview of alginate-based matrices. Reprod Fertil Dev 2014; 26(7): 915-30.
16. Shikanov A, Zhang Z, Xu M, Smith RM, Rajan A, Woodruff TK, et al. Fibrin encapsulation and vascular endothelial growth factor delivery promotes ovarian graft survival in mice. Tissue Eng part A 2011; 17(23-24): 3095-104.
17. Akhavan Taheri M, Rezazadeh Valojerdi M, Ebrahimi B. Intramuscular autotransplantation of vitrified rat ovary encapsulated with hyaluronic acid hydrogel. Biopreserv Biobanking 2016; 14(2): 114-21.
18. Gao JM, Yan J, Li R, Li M, Yan LY, Wang TR, et al. Improvement in the quality of heterotopic allotransplanted mouse ovarian tissues with basic fibroblast growth factor and fibrin hydrogel. Hum Reprod 2013; 28(10): 2784-93.
19. Caligioni CS. Assessing reproductive status/stages in mice. Curr Protoc Neurosci 2009; 48(1): A-4I.
20. Mofarahe ZS, Novin MG, Jafarabadi M, Salehnia M, Noroozian M, Ghorbanmehr N. Effect of human ovarian tissue vitrification/warming on the expression of genes related to folliculogenesis. Iran Biomedical J 2015; 19(4): 220.
21. Xu M, West E, Shea LD, Woodruff TK. Identification of a stage-specific permissive in vitro culture environment for follicle growth and oocyte development. Biol Reprod 2006; 75(6): 916-23.
22. Hornick JE, Duncan FE, Shea LD, Woodruff TK. Isolated primate primordial follicles require a rigid physical environment to survive and grow in vitro. Hum Reprod 2012; 27(6): 1801-10.
23. Camboni A, Van Langendonckt A, Donnez J, Vanacker J, Dolmans MM, Amorim CA. Alginate beads as a tool to handle, cryopreserve and culture isolated human primordial/primary follicles. Cryobiology 2013; 67(1): 64-9.
24. O'Brien MJ, Pendola JK, Eppig JJ. A revised protocol for in vitro development of mouse oocytes from primordial follicles dramatically improves their developmental competence. Biol Reprod 2003; 68(5): 1682-6.
25. Paynter SJ, Cooper A, Fuller BJ, Shaw RW. Cryopreservation of bovine ovarian tissue: structural normality of follicles after thawing and culturein vitro. Cryobiology 1999; 38(4): 301-9.
26. Harlow CR, Shaw HJ, Hillier SG, Hodges JK. Factors influencing follicle-stimulating hormone-responsive steroidogenesis in marmoset granulosa cells: effects of androgens and the stage of follicular maturity. Endocrinology 1988; 122(6): 2780-7.
27. Chang HJ, Moon JH, Lee JR, Jee BC, Suh CS, Kim SH. Optimal condition of vitrification method for cryopreservation of human ovarian cortical tissues. J Obstet Gynaecol Res 2011; 37(8): 1092-101.
28. Ting AY, Yeoman RR, Lawson MS, Zelinski MB. In vitro development of secondary follicles from cryopreserved rhesus macaque ovarian tissue after slow-rate freeze or vitrification. Hum Reprod 2011; 26(9): 2461-72.
29. Xiao Z, Wang Y, Li L, Luo S, Li SW. Needle immersed vitrification can lower the concentration of cryoprotectant in human ovarian tissue cryopreservation. Fertil Steril 2010; 94(6): 2323-8.
30. Silber S, Kagawa N, Kuwayama M, Gosden R. Duration of fertility after fresh and frozen ovary transplantation. Fertil Steril 2010; 94(6): 2191-6.
31. Zhang J, Liu J, Xu KP, Liu B, DiMattina M. Extracorporeal development and ultrarapid freezing of human fetal ova. J Assist Reprod Genet 1995; 12(6): 361-8.
32. Isachenko E, Isachenko V, Rahimi G, Nawroth F. Cryopreservation of human ovarian tissue by direct plunging into liquid nitrogen. Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol 2003; 108(2): 186-93.
ارسال پیام به نویسنده مسئول

ارسال نظر درباره این مقاله
نام کاربری یا پست الکترونیک شما:

CAPTCHA


XML   English Abstract   Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

Shirazi-Tehrani A, Mazoochi T, Akhavan-Taheri M, Salehnia M. The effects of ovarian encapsulation with alginate hydrogel on morphology and follicular count of vitrified mouse ovary. Feyz. 2019; 23 (5) :467-475
URL: http://feyz.kaums.ac.ir/article-1-3813-fa.html

شیرازی تهرانی عاطفه، مازوچی طاهره، اخوان طاهری مریم، صالح نیا مژده. تأثیر انکپسوله کردن تخمدان با هیدروژل آلژینات بر مورفولوژی و شمارش فولیکولی تخمدان انجماد شیشه ای شده موش. دوماه نامه علمي ـ پژوهشي فيض. 1398; 23 (5) :467-475

URL: http://feyz.kaums.ac.ir/article-1-3813-fa.html



دوره 23، شماره 5 - ( دوماه نامه 1398 ) برگشت به فهرست نسخه ها
مجله علمی پژوهشی فیض ::: دانشگاه علوم پزشکی کاشان KAUMS Journal ( FEYZ )
Persian site map - English site map - Created in 0.08 seconds with 32 queries by YEKTAWEB 4030