[صفحه اصلی ]   [Archive] [ English ]  
:: صفحه اصلي :: درباره نشريه :: آخرين شماره :: تمام شماره‌ها :: جستجو :: ثبت نام :: ارسال مقاله :: تماس با ما ::
:: دوره 21، شماره 2 - ( دوماه نامه 1396 ) ::
جلد 21 شماره 2 صفحات 126-133 برگشت به فهرست نسخه ها
بررسی اثر سمیت سلولی و آنتی اکسیدانی کرایزین بر سلول های بنیادی اسپرماتوگونی جداشده از نوزاد موش کوچک آزمایشگاهی
مهران پردل، جواد بهارارا ، الهه امینی
‌استاد مرکز تحقیقات بیولوژی کاربردی تکوین جانوری و گروه زیست شناسی، دانشگاه آزاد اسلامی واحد مشهد ، baharara@yahoo.com
چکیده:   (458 مشاهده)

سابقه و هدف: تاکنون گیاهان زیادی در درمان ناباروری مورد استفاده قرار گرفته ­اند. مطالعات نشان داده­اند که کرایزین به ­عنوان یک متابولیت فعال موجود در شهد برخی گیاهان عملکرد تولید مثلی حیوانات را بهبود می­ بخشد. بنابراین، هدف این پژوهش بررسی اثر کرایزین بر روی سلول ­های بنیادی اسپرم­ساز موش کوچک آزمایشگاهی است.

مواد و روش ­ها: در این پژوهش تجربی سلول­ های بنیادی اسپرماتوگونی موش سوری در محیط DMEM/F12 کشت شده با غلظت­ های مختلف کرایزین (5/2، 5، 10، 20 و 40 میکروگرم بر میلی­ لیتر) به ­مدت 6 و 12 روز تیمار شدند. سپس، سمیت توسط آزمون­ های MTT، اکردین اورنج/ پروپودیوم ایداید، DAPI و ظرفیت آنتی ­اکسیدانی توسط آزمون DCF-DA مورد بررسی قرار گرفت.

نتایج: کرایزین در غلظت­ های زیر 5 میکروگرم سمیت معنی ­داری بر سلول­ های بنیادی اسپرم­ساز اعمال نکرد (0/05>P). در مقابل زیستایی این سلول­ ها تحت تاثیر دوزهای 10، 20 و40 میکروگرم بر میلی­ لیتر کرایزین در روز 6 پس از کشت به میزان 30، 45 و 56 درصد (05/0P<* و 001/0P<***) و در روز 12 به میزان 44، 56 و 65 درصد کاهش معنی­ دار یافت (0/05<P، 0/01<P و 0/001P<). نتایج آزمون DCF-DA نشان داد که کرایزین در غلظت­ های 5، 5/2 میکروگرم دارای 80 درصد خاصیت آنتی ­اکسیدانی است.

نتیجه­ گیری: کرایزین در غلظت­ های پایین می­ تواند اثر حفاظتی روی سلول­ های بنیادی اسپرم­ساز موش سوری داشته باشد که از طریق افزایش زیستایی سلول ­ها، کاهش آپوپتوز سلول­ ها و مهار رادیکال ­های آزاد اثر خود را ایفا می ­کند.

واژه‌های کلیدی: کرایزین، آنتی اکسیدان، سمیت سلولی، ناباروری، سلول های بنیادی اسپرماتوگونی
متن کامل [PDF 464 kb]   (213 دریافت)    
نوع مطالعه: پژوهشي | موضوع مقاله: عمومى
دریافت: ۱۳۹۶/۳/۳ | پذیرش: ۱۳۹۶/۳/۳ | انتشار: ۱۳۹۶/۳/۳
فهرست منابع
1. Venkatesh T, Suresh PS, Tsutsumi R. New insights into the genetic basis of infertility. Appl Clin Genet 2014; 7: 235-43.
2. Palmer NO, Bakos HW, Fullston T, Lane M. Impact of obesity on male fertility, sperm function and molecular composition. Spermatogenesis 2012; 2(4): 253-63.
3. Hermann BP, Sukhwani M, Winkler F, Pascarella JN, Peters KA, Sheng Y, et al. Spermatogonial stem cell transplantation into rhesus testes regenerates spermatogenesis producing functional sperm. Cell Stem Cell 2012; 11(5): 715-726.
4. Vasei N, Baharara J, Zafar Balanezhad S, Amini E. An investigation of the protective impact exerted by aqua extract of Persian Gulf sea cucumber (Holothuria arenicola Semper, 1868) against damages induced by electromagnetic field on male gonads of Balb/C mice. – Nova Biol. Reperta 2015; 2: 216-26.
5. Walker WH. Testosterone signaling and the regulation of spermatogenesis. Spermatogenesis 2011; 1(2): 116-20.
6. Dym M, Kokkinaki M, He Z. Spermatogonial stemcells: mouse and human comparisons. Birth Defects Res C Embryo Today 2009; 87(1): 27-43.
7. Agarwal A, Virk G, Ong C, du Plessis SS. Effect of Oxidative Stress on Male Reproduction. World J Mens Health 2014; 32(1): 1-17.
8. Safarinejad MR. Infertility among couples in a population-based study in Iran: prevalence and associated risk factors. Int J Androl 2008; 31(3): 303-314.
9. Agarwal A, Said TM. Oxidative stress, DNA damage and apoptosis in male infertility: a clinical approach. BJU Int 2005; 95(4): 503-7.
10. Kumar R, Venkatesh S, Kumar M, Tanwar M, Shasmsi MB, Kumar R, et al. Oxidative stress and sperm mitochondrial DNA mutation iidiopathic oligoasthenozoospermic men. Indian J Biochem Biophys 2009; 46(2): 172-7.
11. Walczak–Jedrzejowska R, Wolski JK, Slowikowska–Hilczer J. The role of oxidative stress and antioxidants in male fertility. Cent European J Urol 2013; 66(1): 60-67.
12. Safarnavadeh T, Rastegarpanah M. Antioxidants and infertility treatment, the role of Satureja Khuzestanica: A mini-systematic review. Iran J Reprod Med 2011; 9(2): 61-70.
13. Seandel M, James D, Shmelkov SV, Falciatori I, Kim J, Chavala S, et al. Generation of functional multipotent adult stem cells from GPR125+ germline progenitors. Nature 2007; 449(7160): 346-50.
14. Amini Sarteshnizi N, Teimori H, Zahri S, Mobini Dehkordi M, et al. Effect of Chrysin on AGS human gastric cancer cell line. J Gorgan Uni Med Sci 2015; 16(4): 63-8. [in Persian]
15. Ciftci O, Ozdemir I, Aydin M, Beytur A. Beneficial effects of chrysin on the reproductive system of adult male rats. Andrologia 2012; 44(3): 181-6.
16. Mehri S, Veis Karami H, Vahdati Hassani F, Hosseinzadeh H. Chrysin Reduced Acrylamide-Induced Neurotoxicity in Both in vitro and in vivo Assessments. Iran Biomed J 2014; 18(2): 101-6.
17. Huang YH, Chin CC, Ho HN, Chou CK, Shen CN, Kuo HC, et al. Pluripotency of mouse spermatogonial stem cells maintained by IGF-1- dependent pathway. FASEB J 2009; 23(7): 2076-87.
18. Amini E, Baharara J, Nikdel N, Salek Abdollahi F. Cytotoxic and Pro-Apoptotic Effects of Honey Bee Venom and Chrysin on Human Ovarian Cancer Cells. Asia Pacific J Med Toxicol 2015; 4(2): 68-73.
19. Hara K, Nakagawa T, Enomoto H, Suzuki M, Yamamoto M, Simons BD, et al. Mouse spermatogenic stem cells continually interconvert between equipotent singly isolated and syncytial states. Cell Stem Cell 2014; 14(5): 658-72.
20. Bjelakovic G, Nikolova D, Gluud C. Antioxidant supplements and mortality. Curr Opin Clin Nutr Metab Care 2014; 17(1): 40-4.
21. Gholami M, Saki G, Hemadi M, Khodadadi A, Mohammadi-asl J. Melatonin improves spermatogonial stem cells transplantation efficiency in azoospermic mice. Iran J Basic Med Sci 2014; 17(2): 93-9.
22. Ciftci O, Ozdemir I, Aydin M, Beytur A, Beneficial effects of chrysin on thereproductive systemof adult male rats. Andrologia 2012; 44(3): 181-6.
23. Alkan I, Simsek F, Haklar G, Kervancioglu E, Ozveri H, Yalcin S, et al. Reactive oxygen species production by the spermatozoa of patients with idiopathic infertility: relationship to seminal plasma antioxidants. J Urol 1997; 157(1): 140-3.
24. Miller JK, Brzezinska-Slebodzinska E, Madsen FC. Oxidative stress, antioxidants, and animal function. J Dairy Sci 1993; 76(9): 2812-23.
25. Bekdeşer B, Durusoy N, Özyürek M, Güçlü K, Apak R. Optimization of microwave-assisted extraction of polyphenols from herbal teas and evaluation of their in vitro hypochlorous acid scavenging activity. J Agric Food Chem 2014; 62(46): 11109–15.
ارسال پیام به نویسنده مسئول

ارسال نظر درباره این مقاله
نام کاربری یا پست الکترونیک شما:

کد امنیتی را در کادر بنویسید >



XML   English Abstract   Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

Pordel M, Baharara J, Amini E. Cytotoxic and antioxidant effect of chrysin on neonate mouse spermatogenic stem cells. Feyz. 2017; 21 (2) :126-133
URL: http://feyz.kaums.ac.ir/article-1-3346-fa.html
پردل مهران، بهارارا جواد، امینی الهه. بررسی اثر سمیت سلولی و آنتی اکسیدانی کرایزین بر سلول های بنیادی اسپرماتوگونی جداشده از نوزاد موش کوچک آزمایشگاهی . دوماه نامه علمي ـ پژوهشي فيض. 1396; 21 (2) :126-133

URL: http://feyz.kaums.ac.ir/article-1-3346-fa.html

دوره 21، شماره 2 - ( دوماه نامه 1396 ) برگشت به فهرست نسخه ها
مجله علمی پژوهشی فیض ::: دانشگاه علوم پزشکی کاشان KAUMS Journal ( FEYZ )
Persian site map - English site map - Created in 0.053 seconds with 820 queries by yektaweb 3506