:: دوره 21، شماره 4 - ( دوماه نامه 1396 ) ::
جلد 21 شماره 4 صفحات 358-352 برگشت به فهرست نسخه ها
بررسی مولکولی ژن های تشکیل دهنده بیوفیلم استافیلوکوکوس اورئوس جداشده از شیر خام با روش واکنش زنجیره ای پلیمراز چندگانه
عاطفه محمودی کجیدی ، کیومرٍث امینی
گروه میکروبیولوژی، دانشکده علوم پایه، واحد ساوه، دانشگاه آزاد اسلامی، ساوه ، dr_kumarss_amini@yahoo.com
چکیده:   (3986 مشاهده)
سابقه و هدف: استافیلوکوکوس اورئوس یکی از مهم­ترین عوامل مسمومیت غذایی در جهان می ­باشد. این باکتری پاتوژن توانایی ایجاد بیوفیلم را دارا بوده که می ­تواند منجر به ایجاد آلودگی­های غذایی گردد. حضور ژن ­های بیوفیلم در باکتری بسیار حائز اهمیت است. هدف از این مطالعه شناسایی وجود ژن­ های چسبنده در باکتری است که نقش بسیار مهمی در ویرولانس و قدرت بیماری­زایی آن داشته و حتی از نفوذ آنتی­ بیوتیک ­ها در زمان بیماری­ زایی جلوگیری به­ عمل می ­آورد.
مواد و روش­ ها: تعداد 100 نمونه­ شیر تازه از دام زنده جمع­ آوری شد و به ­­منظور شناسایی ژن­ های چسبنده (eno, cna, ebp, bbp) در ساخت بیوفیلم استافیلوکوکوس اورئوس، تعداد 60 جدایه از آن ها با روش PCR چندگانه مورد بررسی قرار گرفت. علاوه­ براین، فراوانی استافیلوکوکوس­ های مقاوم و حساس به آنتی ­بیوتیک ­های متی­سیلین، ونکومایسین و کلیندامایسین در بین نمونه­ های مورد مطالعه نیز تعیین گردید.
نتایج: از مجموع 60 جدایه از شیر تازه، 4/43 درصد کلونی­ ها دارای ژن کدکننده پروتئین متصل شونده به لامینین یا همان ژن eno بودند. به­ علاوه، 90 درصد نمونه ­ها حساس به ونکومایسین، 50 درصد حساس به کلیندامایسین و 4/43 درصد حساس به متی­ سیلین بودند. هم چنین، توزیع سایر ژن­ های چسبنده (ebp, cna, bbp) به ­ترتیب 6/11، 20 و 25 درصد بود. نتایج بررسی مولکولی حاکی از آن بود که بیشترین درصد ژن موجود، eno بوده و کمترین درصد مربوط به bbp می­ باشد.
نتیجه­ گیری: در مجموع می­ توان گفت در مطالعه حاضر بیشترین میزان حساسیت نمونه­ ها (90 درصد) به ونکومایسین بوده و کمترین مقدار حساسیت (3/43 درصد) مربوط به متی­سیلین می­ باشد.
واژه‌های کلیدی: شیر، بیوفیلم، استافیلوکوکوس اورئوس، PCR چندگانه
متن کامل [PDF 219 kb]   (3544 دریافت)    
نوع مطالعه: پژوهشي | موضوع مقاله: عمومى
دریافت: 1395/9/13 | ویرایش نهایی: 1396/8/20 | پذیرش: 1396/3/18 | انتشار: 1396/7/15
فهرست منابع
1. Fueyo JM, Mendoza MC, Martin MC. Enterotoxins and toxic shock syndrome toxin in Staphylococcus aureus recovered from human nasal carriers and manually handled foods: epidemiological and genetic findings. Microb Infect 2005; 7(2): 187-94.
2. Adwan GM, Abu-Shanab B, Adwan K. Enterotoxigenic Staphylococcus aureus in raw milk in the North of Palestine. Turk J Biol 2006; 29(4): 229-32.
3. Qasemi HR. Iran and Its Policy Against Terrorism. Eradicating Terrorism from the Middle East: Springer; 2016. p. 201-21.
4. Ghasemian A, Najar Peerayeh S, Bakhshi B, Mirzaee M. The microbial surface components recognizing adhesive matrix molecules (MSCRAMMs) genes among clinical isolates of Staphylococcus aureus from hospitalized children. Iran J Pathol 2015; 10(4): 258-64.
5. Arciola CR, Campoccia D, Gamberini S, Baldassarri L, Montanaro L. Prevalence of cna fnbA and fnbB adhesin genes among Staphylococcus aureus isolates from orthopedic infections associated to different types of implant. FEMS Microbiol Letters 2005; 246(1): 81-6.
6. Yarwood JM, Bartels DJ, Volper EM, Greenberg EP. Quorum sensing in Staphylococcus aureus biofilms. J Bacteriol 2004; 186(6): 1838-50.
7. Lina G, Boutite F, Tristan A, Bes M, Etienne J, Vandenesch F. Bacterial competition for human nasal cavity colonization: role of staphylococcal agr alleles. J Appl Environ Microbiol 2003; 69(1): 18-23.
8. Tristan A, Ying L, Bes M, Etienne J, Vandenesch F, Lina G. Use of multiplex PCR to identify Staphylococcus aureus adhesins involved in human hematogenous infections. J Clin Microbiol 2003; 41(9): 4465-7.
9. Maktabi S, Pourmehdi M, Zarei M, Fooladgar AA. Detection of Antibiotic Resistant Listeria spp. in Beef Burgers Distributed in Ahvaz City, Iran. Jundishapur J Health Sci 2016; 8(2(.
10. Bakhshandeh H, Soleimani M, Hosseini SS, Hashemi H, Shabani I, Shafiee A, et al. Poly (epsilon-caprolactone) nanofibrous ring surrounding a polyvinyl alcohol hydrogel for the development of a biocompatible two-part artificial cornea. Int J Nanomedicine 2011; 6: 1509.
11. De S, Brahma B, Polley S, Mukherjee A, Banerjee D, Gohaina M, et al. Simplex and duplex PCR assays for species specific identification of cattle and buffalo milk and cheese. Food Control 2011; 22(5): 690-6.
12. El-Ghodban A, Ghenghesh KS, Marialigeti K, Esahli H, Tawil A. PCR detection of toxic shock syndrome toxin of Staphylococcus aureus from Tripoli, Libya. J Med Microbiol 2006; 55(2): 179-82.
13. Gordon RJ, Lowy FD. Pathogenesis of methicillin-resistant Staphylococcus aureus infection. Clin Infectious Dis 2008; 46(Supplement 5): S350-9.
14. Kuzma K, Malinowski E, Klossowska A, Kaczmarowski M, Smulski S. Detection of adhesin genes by PCR and analysis of their distribution in Staphylococcus aureus strains isolated from bovine mastitis. Bull Vet Inst Pulawy 2006; 50(3): 319.
15. Miller LG, Diep BA. Colonization, fomites, and virulence: rethinking the pathogenesis of community-associated methicillin-resistant Staphylococcus aureus infection. Clin Infect Dis 2008; 46(5): 752-60.


XML   English Abstract   Print



Creative Commons License
This open access journal is licensed under a Creative Commons Attribution-NonCommercial ۴.۰ International License. CC BY-NC ۴. Design and publishing by Kashan University of Medical Sciences.
Copyright ۲۰۲۳© Feyz Medical Sciences Journal. All rights reserved.
دوره 21، شماره 4 - ( دوماه نامه 1396 ) برگشت به فهرست نسخه ها