:: دوره 26، شماره 6 - ( دوماه نامه 1401 ) ::
جلد 26 شماره 6 صفحات 656-646 برگشت به فهرست نسخه ها
تأثیر تغذیه پرچرب و تمرین استقامتی تداومی بر بیان فاکتورهای رونویسی TFEB و E2F1 در بافت چربی احشائی موش‌های سوری
سعید دانش یار ، زهرا میراخوری ، یزدان فروتن
گروه تربیت بدنی، دانشکده علوم انسانی، دانشگاه آیت‌الله بروجردی، لرستان، ایران ، s.daneshyar@abru.ac.ir
چکیده:   (815 مشاهده)
سابقه و هدف: فاکتورهای رونویسی TEEB و E2F1 نقش مهمّی در متابولیسم ایفا می‌کنند. در این پژوهش، تأثیر تغذیه پرچرب و تمرین استقامتی تداومی بر بیان ژن‌های این دو عامل در بافت چربی احشائی موش‌های سوری، مورد بررسی قرار گرفت.
مواد و روش‌ها: در این مطالعه تجربی، 28 سر موش سوری نر (C57BL/6) در چهار گروهِ کنترل، غذای پرچرب، تمرین ورزشی و غذای پرچرب - تمرین ورزشی قرار گرفتند. موش‌های گروه‌های غذای پرچرب به‌مدت 12 هفته غذای پرچرب مصرف کردند. موش‌های گروه‌های تمرینی به‌مدت شش هفته، تحت تمرین استقامتی بر روی نوارگردان قرار گرفتند. موش‌های گروه تمرین - غذای پرچرب علاوه‌بر مصرف غذای پرچرب، تحت تمرین ورزشی قرار گرفتند. برای اندازه‌گیری بیان نسبی ژن‌های E2F1 و TFEB از روش Real Time–PCR استفاده شد.
نتایج: 1) بر اثر تغذیه پرچرب و تمرین ورزشی، میزان بیان ژن TFEB در بافت چربی احشائی افزایش یافت )0/05>(P. 2) ترکیب تمرین ورزشی و تغذیه پرچرب، بیان TFEB را افزایش داد )0/02=(P؛ اما این تأثیر، در قیاس با اثر جداگانه تمرین ورزشی و تغذیه پرچرب بیشتر نبود (0/05>P). 3) تغذیه پرچرب، میزان بیان ژن E2F1 را افزایش داد )0/03=(P. 4) تمرین ورزشی و ترکیب غذای پرچرب و تمرین ورزشی، هیچ‌کدام افزایش معنی‌داری در بیان E2F1 ایجاد نکردند (0/05>P).
نتیجه‌گیری: تمرین استقامتی تداومی، تأثیر مشابهی (و نه متضاد) با تغذیه پرچرب در بیان ژن TFEB دارد. همچنین می‌توان تصور کرد که این نوع تمرین ورزشی می‌تواند تأثیر افزایشی تغذیه پرچرب در بیان E2F1 را تا حدودی خنثی کند.
واژه‌های کلیدی: تغذیه پرچرب، تمرین ورزشی، تمرین استقامتی، بافت چربی، E2F1، TFEB
متن کامل [PDF 573 kb]   (310 دریافت)    
نوع مطالعه: پژوهشي | موضوع مقاله: medicine, paraclinic
دریافت: 1401/5/13 | ویرایش نهایی: 1401/12/1 | پذیرش: 1401/8/16 | انتشار: 1401/12/3
فهرست منابع
1. Caudwell P, Gibbons C, Finlayson G, Näslund E, Blundell J. Physical Activity, Energy Intake, and Obesity: The Links Between Exercise and Appetite. Curr Obes Rep 2013; 2(2): 185-90.
2. Cummins TD, Holden CR, Sansbury BE, Gibb AA, Shah J, Zafar N, et al. Metabolic remodeling of white adipose tissue in obesity. Am J Physiol Endocrinol 2014; 307(3): E262-77.
3. He MQ, Wang JY, Wang Y, Sui J, Zhang M, Ding X, et al. High-fat diet-induced adipose tissue expansion occurs prior to insulin resistance in C57BL/6J mice. Chronic Dis Transl Med 2020; 6(3): 198-207.
4. van der Heijden RA, Sheedfar F, Morrison MC, Hommelberg PP, Kor D, Kloosterhuis NJ, et al. High-fat diet induced obesity primes inflammation in adipose tissue prior to liver in C57BL/6j mice. Aging 2015; 7(4): 256-68.
5. McKie GL, Wright DC. Biochemical adaptations in white adipose tissue following aerobic exercise: from mitochondrial biogenesis to browning. Biochem J 2020; 477(6): 1061-81.
6. Gollisch KS, Brandauer J, Jessen N, Toyoda T, Nayer A, Hirshman MF, et al. Effects of exercise training on subcutaneous and visceral adipose tissue in normal- and high-fat diet-fed rats. Am J Physiol Endocrinol 2009; 297(2): E495-504.
7. Rocha-Rodrigues S, Rodríguez A, Gonçalves IO, Moreira A, Maciel E, Santos S, et al. Impact of physical exercise on visceral adipose tissue fatty acid profile and inflammation in response to a high-fat diet regimen. Int J Biochem Cell Biol 2017; 87: 114-24.
8. Napolitano G, Ballabio A. TFEB at a glance. J Cell Sci 2016; 129(13): 2475-81.
9. Settembre C, De Cegli R, Mansueto G, Saha PK, Vetrini F, Visvikis O, et al. TFEB controls cellular lipid metabolism through a starvation-induced autoregulatory loop. Nat Cell Biol 2013; 15(6): 647-58.
10. Salma N, Song JS, Kawakami A, Devi SP, Khaled M, Cacicedo JM, et al. Tfe3 and Tfeb transcriptionally regulate peroxisome proliferator-activated receptor γ2 expression in adipocytes and mediate adiponectin and glucose levels in mice. Mol Cell Biol 2017; 37(15): e00608-16.
11. Denechaud PD, Fajas L, Giralt A. E2F1, a novel regulator of metabolism. Front Endocrinol 2017; 8: 311.
12. Xiong M, Hu W, Tan Y, Yu H, Zhang Q, Zhao C, et al. Transcription Factor E2F1 Knockout Promotes Mice White Adipose Tissue Browning Through Autophagy Inhibition. Front Physiol 2021; 12.
13. Kim J, Kim SH, Kang H, Lee S, Park SY, Cho Y, et al. TFEB–GDF15 axis protects against obesity and insulin resistance as a lysosomal stress response. Nat Metab 2021; 3(3): 410-27.
14. Choi Y, Jang S, Choi M-S, Ryoo ZY, Park T. Increased expression of FGF1-mediated signaling molecules in adipose tissue of obese mice. J Physiol Biochem 2016; 72(2): 157-67.
15. Haim Y, Blüher M, Slutsky N, Goldstein N, Klöting N, Harman-Boehm I, et al. Elevated autophagy gene expression in adipose tissue of obese humans: a potential non-cell-cycle-dependent function of E2F1. Autophagy 2015; 11(11): 2074-88.
16. Shirkhani S, Marandi SM, Kazeminasab F, Esmaeili M, Ghaedi K, Esfarjani F, et al. Comparative studies on the effects of high-fat diet, endurance training and obesity on Ucp1 expression in male C57BL/6 mice. Gene 2018; 676: 16-21.
17. Arras M, Autenried P, Rettich A, Spaeni D, and Rülicke T. Optimization of intraperitoneal injection anesthesia in mice: drugs, dosages, adverse effects, and anesthesia depth. Comp Med 2001; 51(5): 443-56.
18. Teixeira-Coelho F, Fonseca CG, Barbosa NHS, Vaz FF, Cordeiro LMdS, Coimbra CC, et al. Effects of manipulating the duration and intensity of aerobic training sessions on the physical performance of rats. PloS One 2017; 12(8): e0183763.
19. Høydal MA, Wisløff U, Kemi OJ, and Ellingsen Ø. Running speed and maximal oxygen uptake in rats and mice: practical implications for exercise training. Eur J Cardiovasc Prev Rehabil 2007; 14(6): 753-760.
20. Wang Y, Wisloff U, Kemi OJ. Animal models in the study of exercise-induced cardiac hypertrophy. Physiol Res 2010; 59(5): 633.
21. Deng Y, Xu J, Zhang X, Yang J, Zhang D, Huang J, et al. Berberine attenuates autophagy in adipocytes by targeting BECN1. Autophagy 2014; 10(10): 1776-86.
22. Chao X, Wang S, Yang L, Ni HM, and Ding WX. Trehalose activates hepatic transcription factor EB (TFEB) but fails to ameliorate alcohol‐impaired TFEB and liver injury in mice. Alcohol Clin Exp Res 2021; 45(10): 1950-64.
23. Flowers S, Xu F, and Moran E. Cooperative activation of tissue-specific genes by pRB and E2F1. Cancer research 2013; 73(7): 2150-8.
24. Parousis A, Carter HN, Tran C, Erlich AT, Mesbah Moosavi ZS, Pauly M, et al. Contractile activity attenuates autophagy suppression and reverses mitochondrial defects in skeletal muscle cells. Autophagy 2018; 14(11): 1886-97.
25. Castro G, Areias MF, Weissmann L, Quaresma PGF, Katashima CK, Saad MJA, et al. Diet-induced obesity induces endoplasmic reticulum stress and insulin resistance in the amygdala of rats. FEBS Open Bio 2013; 3: 443-9.
26. Ferhat M, Funai K, Boudina S. Autophagy in adipose tissue physiology and pathophysiology. Antioxid Redox Signal 2019; 31(6): 487-501.
27. Erlich AT, Brownlee DM, Beyfuss K, and Hood DA. Exercise induces TFEB expression and activity in skeletal muscle in a PGC-1α-dependent manner. Am J Physiol, Cell Physiol 2018; 314(1): C62-C72.
28. Steinberg GR, Carling D. AMP-activated protein kinase: the current landscape for drug development. Nat Rev Drug Discov 2019; 18(7): 527-51.
29. Paquette M, El-Houjeiri L, L CZ, Puustinen P, Blanchette P, Jeong H, et al. AMPK-dependent phosphorylation is required for transcriptional activation of TFEB and TFE3. Autophagy 2021; 17(12): 3957-3975.
30. Evans TD, Zhang X, Jeong SJ, He A, Song E, Bhattacharya S, et al. TFEB drives PGC-1α expression in adipocytes to protect against diet-induced metabolic dysfunction. Sci Signal 2019; 12(606): eaau2281.
31. Wang S, Chen Y, Li X, Zhang W, Liu Z, Wu M, et al. Emerging role of transcription factor EB in mitochondrial quality control. Biomed Pharmacother 2020; 128: 110272.
32. Mansueto G, Armani A, Viscomi C, D'Orsi L, De Cegli R, Polishchuk EV, et al. Transcription Factor EB Controls Metabolic Flexibility during Exercise. Cell Metab 2017; 25(1): 182-96.
33. Nautiyal J, Christian M, Parker MG. Distinct functions for RIP140 in development, inflammation, and metabolism. Trends Endocrinol Metab 2013; 24(9): 451-9.
34. Włodarczyk M, Nowicka G. Obesity, DNA damage, and development of obesity-related diseases. Int J Mol Sci 2019; 20(5): 1146.
35. Stevens C, Thangue NB. The emerging role of E2F-1 in the DNA damage response and checkpoint control. DNA Repair 2004; 3(8-9): 1071-9.
36. Barzegari A, Kazari S, Satvati Niri Z, Alizadeh Mirashrafi MA. Comparison of the effect of different intensities of aerobic exercise on the expression of transcription factors E2F1 and E2F4 in liver tissue of Wistar rats. RJMS 2022; 29(1): 48-59. [in Persian]
37. Radák Z, Naito H, Kaneko T, Tahara S, Nakamoto H, Takahashi R, et al. Exercise training decreases DNA damage and increases DNA repair and resistance against oxidative stress of proteins in aged rat skeletal muscle. Pflügers Arch 2002; 445(2): 273-8.
38. Soares JP, Silva AM, Oliveira MM, Peixoto F, Gaivão I, Mota MP. Effects of combined physical exercise training on DNA damage and repair capacity: role of oxidative stress changes. Age 2015; 37(3): 1-12.
39. Setayesh T, Mišík M, Langie SAS, Godschalk R, Waldherr M, Bauer T, et al. Impact of Weight Loss Strategies on Obesity-Induced DNA Damage. Mol Nutr Food Res 2019; 63(17): e1900045.



XML   English Abstract   Print



Creative Commons License
This open access journal is licensed under a Creative Commons Attribution-NonCommercial ۴.۰ International License. CC BY-NC ۴. Design and publishing by Kashan University of Medical Sciences.
Copyright ۲۰۲۳© Feyz Medical Sciences Journal. All rights reserved.
دوره 26، شماره 6 - ( دوماه نامه 1401 ) برگشت به فهرست نسخه ها