:: دوره 22، شماره 1 - ( دوماه نامه 1397 ) ::
جلد 22 شماره 1 صفحات 15-24 برگشت به فهرست نسخه ها
ارزیابی بافت شناختی آسیب بیضه ناشی از بابزیوز تجربی در موش سوری
سید حمید شریعتی، علی شالیزار جلالی* ، بیژن اسمعیل نژاد، رامین مظاهری خامنه
استادیار گروه علوم پایه، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه ارومیه، ارومیه، ایران ، a.shalizar@urmia.ac.ir
چکیده:   (1206 مشاهده)
سابقه و هدف: بابزیاها دومین انگل خونی شایع در پستانداران پس از تریپانوزوماها می ­باشند و بابزیوز به­ عنوان یک بیماری مشترک نوپدید بسیار مورد توجه قرار گرفته است. هدف اصلی مطالعه حاضر ارزیابی تغییرات بافت­ شناختی بیضه متعاقب القاء بابزیوز تجربی توسط بابزیا بایژمینا در موش سوری بود.
مواد و روش­ ها­: در این مطالعه تجربی 24 موش­­ سوری نر بالغ به­ صورت تصادفی به چهار گروه مساوی شامل شاهد فاقد تیمار، شم (حیوانات 2/0 میلی­ لیتر سرم فیزیولوژی را به­ صورت داخل­ صفاقی همزمان با القاء بابزیوز تجربی دریافت می ­کردند)، برداشت طحال و بابزیوز تجربی تقسیم شدند. بابزیوز تجربی به ­واسطه تزریق داخل­ صفاقی 2/0 میلی­ لیتر نمونه خون آلوده حاوی هپارین گاوی که واجد آلودگی تأیید شده با بابزیا بایژمینا بود به موش ­هایی که قبلا طحال آن­ها به روش جراحی خارج گشته بود، القاء گردید. تمامی حیوانات پس از گذشت 5 روز از شروع مطالعه آسان­کُشی شدند و ساختار بافتی بیضه متعاقب تأیید آلودگی به­ واسطه بررسی­ های ریزبینی و مولکولی مورد ارزیابی قرار گرفت.
نتایج: بابزیوز تجربی کاهش قابل ­توجهی در سطح مقطع عرضی، کیفیت، بلوغ و تعداد مقاطع لوله­ های اسپرم­ساز به همراه تغییرات مورفولوژیک شدید در بافت بیضه مانند کاهش بارز اسپرماتوژنز و توقف بلوغ اسپرماتوژنیک را در مقایسه با گروه­ های شاهد، شم و برداشت طحال سبب گردید.
نتیجه­ گیری: یافته­ های مطالعه حاضر آشکار ساخت که آلودگی با بابزیا بایژمینا در موش سوری احتمالا به ­واسطه اختلال در روند خون­رسانی عروق خونی کوچک و کاهش جریان خون می­ تواند به آسیب بیضه منجر شود.
واژه‌های کلیدی: بافت شناسی، بیضه، موش، بابزیا بایژمینا
متن کامل [PDF 504 kb]   (139 دریافت)    
نوع مطالعه: پژوهشي | موضوع مقاله: عمومى
دریافت: ۱۳۹۶/۶/۲۵ | پذیرش: ۱۳۹۶/۱۱/۲ | انتشار: ۱۳۹۶/۱۱/۲
فهرست منابع
1. Uilenberg G. Babesia-a historical overview. Vet Parasitol 2006; 138(1-2): 3-10.
2. Ahmed J, Yin H, Schnittger L, Jongejan F. Ticks and tick-borne diseases in Asia with special emphasis on China. Parasitol Res 2002; 88(13 Suppl 1): S51-5.
3. Altay K, Aydin MF, Dumanli N, Aktas M. Molecular detection of Theileria and Babesia infections in cattle. Vet Parasitol 2008; 158(4): 295-301.
4. Homer MJ, Aguilar-Delfin I, Telford SR 3rd, Krause PJ, Persing DH. Babesiosis. Clin Microbiol Rev 2000; 13(3): 451-69.
5. Hamoda AF, Radwan M, Rashed R, Amin A. Toxic effect of babesiosis in cattle and chemo‌therap‌eutic treatment in Egypt. Am J Infect Dis Microbiol 2014; 2(5): 91-6.
6. Jankovic Velickovic L, Stefanovic V. Hypoxia and spermatogenesis. Int Urol Nephrol 2014; 46(5): 887-94.
7. Mozafari AA, Shahrooz R, Ahmadi A, Malekinjad H, Mardani K. Protective effect of ethyl pyruvate on mice sperm parameters in phenylhydrazine induced hemolytic anemia. Vet Res Forum 2016; 7(1): 63–8.
8. Jalali AS, Behfar M, Nourian A. Testicular torsion treatment as a male reproductive health concern. J Trauma Treat 2016; 5(3): 329.
9. Zintl A, Mulcahy G, Skerrett HE, Taylor SM, Gray JS. Babesia divergens, a bovine blood parasite of veterinary and zoonotic importance. Clin Microbiol Rev 2003; 16(4): 622-36.
10. Khamesipour F, Doosti A, Koohi A, Chehelgerdi M, Mokhtari Farsani A, Chengula AA. Determination of the presence of Babesia DNA in blood sampels of cattle, camel and sheep in Iran by PCR. Arch Biol Sci 2015; 67(1): 83-90.
11. Akel T, Mobarakai N. Hematologic mani‌festations of babesiosis. Ann Clin Microbiol Antimicrob 2017; 16(1): 6.
12. Jalali AS, Hasanzadeh S, Malekinejad H. Chemo‌protective effect of Crataegus monogyna aqueous extract against cyclophosphamide-induced reproductive toxicity. Vet Res Forum 2011; 2(4): 266-73.
13. Sivakumar T, Altangerel K, Battsetseg B, Battur B, Aboulaila M, Munkhjargal T, et al. Genetic detection of Babesia bigemina from Mongolian cattle using apical membrane antigen-1 gene-based PCR assay. Vet Parasitol 2012; m187(1-2): 17-22.
14. Jalali AS, Hasanzadeh S, Malekinejad H. Achillea millefolium inflorescence aqueous extract ameliorates cyclophosphamide-induced toxicity in rat testis: stereological evidences. Chin J Nat Med 2012; 10(4): 247-54.
15. Johnsen SG. Testicular biopsy score count – a method for registration of spermatogenesis in human testes: normal values and results in 335 hypogonadal males. Hormones 1970; 1(1): 2–25.
16. Ghasemi FM, Faghani M, Khajehjahromi S, Bahadori M, Nasiri E, Hemadi M. Effect of melatonin on proliferative activity and apoptosis in spermatogenic cells in mouse under chemotherapy. J Reprod Contracept 2010; 21(2): 79-94.
17. Hunfeld KP, Hildebrandt A, Gray JS. Babesiosis: Recent insights into an ancient disease. Int J Parasitol 2008; 38(11): 1219-37.
18. Vannier E, Gewurz BE, Krause PJ. Human Babesiosis. Infect Dis Clin North Am 2008; 22(3): 469–ix.
19. Mallick IH, Yang W, Winslet MC, Seifalian AM. Ischemia-reperfusion injury of the intestine and protective strategies against injury. Digest Dis Sci 2004; 49(9): 1359-77.
20. Cho SS, Rudloff I, Berger PJ, Irwin MG, Nold MF, Cheng W, et al. Remifentanil ameliorates intestinal ischemia-reperfusion injury. BMC Gastroenterol 2013; 13: 69.
21. Filho DW, Torres MA, Bordin AL, Crezcynski-Pasa TB, Boveris A. Spermatic cord torsion, reactive oxygen and nitrogen species and ischemia-reperfusion injury. Mol Aspects Med 2004; 25(1-2): 199-210.
22. Yurtcu M, Abasiyanik A, Biçer S, Avunduk MC. Efficacy of antioxidant treatment in the prevention of testicular atrophy in experimental testicular torsion. J Pediatr Surg 2009; 44(9): 1754-8.
23. Karaguzel E, Kutlu Ö, Yuluğ E, Mungan S, Kazaz İO, Tok DS, et al. Comparison of the protective effect of dipyridamole and acetylsalicylic acid on long-term histologic damage in a rat model of testicular ischemia-reperfusion injury. J Pediatr Surg 2012; 47(9): 1716-23.
24. Lesnefsky EJ. Tissue iron overload and mechanisms of iron-catalyzed oxidative injury. Adv Exp Med Biol 1994; 366: 129-46.
25. Nilsson UA, Schoenberg MH, Aneman A, Poch B, Magadum S, Beger HG, et al. Free radicals and pathogenesis during ischemia and reperfusion of the cat small intestine. Gastroenterology 1994; 106(3): 629-36.
26. Toyokuni S. Reactive oxygen species-induced molecular damage and its application in pathology. Pathol Int 1999; 49(2): 91-102.
27. Panes J, Perry M, Granger DN. Leukocyte-endothelial cell adhesion: avenues for therapeutic intervention. Br J Pharmacol 1999; 126(3): 537-50.
28. Sikka SC. Role of oxidative stress and antioxidants in andrology and assisted reproductive technology. J Androl 2004; 25(1): 5-18.
29. Naughton BA, Dornfest BS, Bush ME, Carlson CA, Lapin DM. Immune activation is associated with phenylhydrazine-induced anemia in the rat. J Lab Clin Med 1990; 116(4): 498-507.
30. Irvine DS, Twigg JP, Gordon EL, Fulton N, Milne PA, Aitken RJ. DNA integrity in human spermatozoa: relationships with semen quality. J Androl 2000; 21(1): 33–44.
31. Lysiak JJ, Nguyen QA, Kirby JL, Turner TT. Ischemia-reperfusion of the murine testis stimulates the expression of proinflammatory cytokines and activation of c-jun N-terminal kinase in a pathway to E-selectin expression. Biol Reprod 2003; 69(1): 202-10.
32. Mogilner JG, Lurie M, Coran AG, Nativ O, Shiloni E, Sukhotnik I. Effect of diclofenac on germ cell apoptosis following testicular ischemia-reperfusion injury in a rat. Pediatr Surg Int 2006; 22(1): 99-105.
33. Cao L, Leers-Sucheta S, Azhar S. Aging alters the functional expression of enzymatic and non-enzymatic anti-oxidant defense systems in testicular rat Leydig cells. J Ster Biochem Mol Biol 2004; 88(1): 61-7.
34. McLachlan RI, O'Donnell L, Meachem SJ, Stanton PG, de Kretser DM, Pratis K, et al. Identification of specific sites of hormonal regulation in spermatogenesis in rats, monkeys, and man. Recent Prog Horm Res 2002; 57: 149-79.
35. Elangovan N, Chiou TJ, Tzeng WF, Chu ST. Cyclophosphamide treatment causes impairment of sperm and its fertilizing ability in mice. Toxicology 2006; 222(1-2): 60-70.
36. Mruk DD, Cheng CY. Sertoli-Sertoli and Sertoli-germ cell interactions and their significance in germ cell movement in the seminiferous epithelium during spermatogenesis. Endocr Rev 2004; 25(5): 747-806.
37. Rezvanfar M, Sadrkhanlou R, Ahmadi A, Shojaei-Sadee H, Rezvanfar M, Mohammadirad A, et al. Protection of cyclophosphamide-induced toxicity in reproductive tract histology, sperm characteristics, and DNA damage by an herbal source; evidence for role of free-radical toxic stress. Human Exp Toxicol 2008; 27(12): 901-10.
38. Shamaei-Tousi A, Collin O, Bergh A, Bergström S. Testicular damage by microcirculatory disruption and colonization of an immune-privileged site during Borrelia crocidurae infection. J Exp Med 2001; 193(9): 995–1004.
39. Athanasou NA, Hatton C, McGee JO, Weatherall DJ. Vascular occlusion and infarction in sickle cell crisis and the sickle chest syndrome. J Clin Pathol 1985; 38(6): 659-64.
40. Esmaeilnejad B, Tavassoli M, Asri-Rezaei S, Dalir-Naghadeh B. Evaluation of antioxidant status and oxidative stress in sheep naturally infected with Babesia ovis. Vet Parasitol 2012; 185(2-4): 124-30.
41. Jalali AS, Esmaeilnejad B. Babesiosis as a male infertility risk factor. J Vet Med Health 2017; 1: e001.


XML   English Abstract   Print



دوره 22، شماره 1 - ( دوماه نامه 1397 ) برگشت به فهرست نسخه ها