:: دوره 21، شماره 4 - ( دوماه نامه 1396 ) ::
جلد 21 شماره 4 صفحات 305-316 برگشت به فهرست نسخه ها
بررسی تاثیر عصاره آبی برگ گیاه حرا (Avicennia marina (Forsk.) Vierh.) بر فعالیت آنزیم های کبدی، شاخص های استرس اکسیداتیو و هیستوپاتولوژی کبد در موش های صحرایی دیابتی
اکرم حمزه وی، سید دامون صدوقی* ، راهله رهباریان
دکتری تخصصی بیولوژی سلولی تکوین باشگاه پژوهشگران جوان و نخبگان، واحد مشهد، دانشگاه آزاد اسلامی، مشهد، ایران ، damoon.sadoughi@mshdiau.ac.ir
چکیده:   (1196 مشاهده)

سابقه و هدف: گیاه حرا دارای اثرات ضددیابتی و آنتی­ اکسیدانی است. این مطالعه به­ منظور تعیین اثر عصاره آبی برگ این گیاه بر فعالیت آنزیم­های کبدی، شاخص­های استرس­اکسیداتیو و هیستوپاتولوژی کبد در موش­های صحرائی دیابتی انجام شده است.
مواد و روش ­ها: در این مطالعه تجربی تعداد 28 سر موش صحرایی نر به گروه ­های مساوی شاهد، شاهد دیابتی و تجربی دیابتی 1 و 2 تقسیم شدند. گروه ­های شاهد دیابتی و تجربی دیابتی، با یک ­بار تزریق داخل صفاقی 120 میلی ­گرم بر کیلوگرم آلوکسان دیابتی شدند. گروه­ های تجربی دیابتی، یک ­روز در میان و به ­مدت یک ماه، عصاره آبی حرا را به­ صورت داخل صفاقی با غلظت ­های 100 و 200 میلی­ گرم بر کیلوگرم دریافت نمودند. به نمونه­ های گروه­ شاهد و شاهد دیابتی آب مقطر استریل تزریق شد. در پایان دوره تیمار سطح سرمی آنزیم­ های ALT، AST، GGT و ALP بررسی شد. سپس، سطح آنزیم­های آنتی ­اکسیدانی SOD، GST، CAT و MDA در بافت کبد اندازه ­گیری شد. مقاطع بافتی کبد نیز تهیه شده و توسط میکروسکوپ نوری بررسی گردید.
نتایج: تجویز عصاره حرا (100 و 200 میلی­ گرم بر کیلوگرم) به موش­ های صحرایی دیابتی سطح سرمی آنزیم­ های کبدی و سطح بافتی MDA را به­ طور معنی­ داری کاهش داد. هم چنین، فعالیت آنزیم­های آنتی­ اکسیدانی بافت کبد افزایش یافت (0/05<P). عصاره حرا به­ صورت وابسته به دوز آسیب‌های بافت کبد را در موش ­های صحرایی دیابتی کاهش داد.
نتیجه­ گیری: عصاره حرا شاخص­های استرس­اکسیداتیو بافت کبد موش ­های صحرایی دیابتی را بهبود می­ دهد و موجب کاهش سطح سرمی آنزیم ­های کبدی آنها می­ شود. هم­ چنین، این عصاره سبب بهبود آسیب­ های کبدی القاء شده توسط دیابت می ­شود.

واژه‌های کلیدی: دیابت شیرین، حرا، آنزیم کبدی، استرس‌اکسیداتیو، موش صحرایی
متن کامل [PDF 469 kb]   (325 دریافت)    
نوع مطالعه: پژوهشي | موضوع مقاله: عمومى
دریافت: ۱۳۹۵/۱/۱۹ | پذیرش: ۱۳۹۶/۴/۱۳ | انتشار: ۱۳۹۶/۷/۱۳
فهرست منابع
1. Mordes JP, Bortell R, Blankenhorn EP, Rossini AA, Greiner DL. Rat models of type of tyoe 1 diabetes: Genetics, environment and autoimmunity. ILAR J 2004; 45(3): 278-91.
2. Rochette L, Zeller M, Cottin Y, Vergely C. Diabetes, oxidative stress and therapeutic strategies. Biochim Biophys Acta 2014; 1840(9): 2709-29.
3. Firoozrai M, Nourbakhsh M, Razzaghi Azar M, Bastani AH. Increase in Erythrocyte Membrane Susceptibility and Oxidative Stress in Patients with Type 1 Diabetes Mellitus. RJMS 2004; 11(42): 611-21. [in Persian]
4. Góth L, Nagy T. Acatalasemia and diabetes mellitus. Arch Biochem Biophys 2012; 525(2): 195-200.
5. Henriksen EJ, Diamond-Stanic MK, Marchionne EM. Oxidative stress and the etiology of insulin resistance and type 2 diabetes. Free Radic Biol Med 2011; 51(5): 993-9.
6. Salimnejad R, Jalali M, Nikravesh MR, Fazel AR. Effect of Garlic Aqueous Extract on Markers of Oxidative Stress in Diabetic Rats Testes. J Rafsanjan Univ Med Sci 2014; 13(4): 371-82. [in Persian]
7. Naik SR. Antioxidants and their role in biological functions: An overview. Indian Drugs 2003; 40(9): 501-16.
8. Davi G, Falco A, Patrono C. Lipid peroxidation in diabetes mellitus, Antioxid. Redox Signal 2005; 7(1-2): 256-68.
9. Fatehi-Hassanabad Z, Chan CB, Furman BL. Reactive oxygen species and endothelial function in diabetes. Eur J Pharmacol 2010; 636(1-3): 8-17.
10. Shrilatha B. Occurrence of oxidative impairments, response of antioxidant defences and associated biochemical perturbations in male reproductive milieu in the Streptozotocin diabetic rat. Int J Androl 2007; 30(6): 508-18.
11. Saburi S, Mohtadinia J, Ali-Asgarzadeh A, Nomi-Gholzar S, Yusefirad E. The relationship between serum level of chromium and serum malondialdehyde in patients with type II diabetes. J Shahrekord Univ Med Sci 2010; 12(2): 1-6. [in Persian]
12. Ahmadieh H, Azar ST. Liver disease and diabetes: Association, pathophysiology, and management. Diabetes Res Clin Pract 2014; 104(1): 53-62.
13. Rezaei A, Shekarfourosh S, Ashtiyani SC, Aqababa H, Zarei A, et al. The effects of Artemisia aucheri extract on hepatotoxicity induced by thioacetamid in male rats. Avicenna J Phytomedicine 2013; 3(4): 293-301. [in Persian]
14. Koyuturk M, Tunali S, Bolkent S, Yanardag R. Effects of vanadyl sulfate on liver of streptozotocininduced diabetic rats. Biol Trace Elem Res 2005; 104(3): 233-47.
15. Hasan FA, Owyed S. Interpretation of liver chemistry tests. Bull Kuwait Inst Med Spec 2003; 2(1): 27-31.
16. Maritim A, Sanders RA, Watkins JB. Diabetes, oxidative stress, and antioxidants: a review. J Biochem Mol Toxicol 2003; 17(1): 24-38.
17. Patel NT, Gupta A, Pandey AN. Salinity tolerance of Avicennia marina (Forssk.) Vierh from Gujarat coasts of India. Aquatic Botany 2010; 93(1): 9-16.
18. Soleimani Z, Mirazi N. The Effect of Avicennia Marina hydroethanolic Leaf Extract on Testes Tissue and Spermatogenesis in Male Rats Induced with Carbon Tetrachloride. Armaghane-danesh 2015; 20(8): 677-88. [in Persian]
19. Fathi Moghaddam H, Mokhtari M, Kamaei L, Ahangarpour A. Effects of Avicennia Marina leaves aqueous and hydro alcoholic extract on streptozotocin-induced diabetic male rats. J Rafsanjan Univ Med Sci 2011; 10(4): 245-54. [in Persian]
20. Itoigawa M, Ito C, Tan HT, Okuda M, Tokuda H, Nishino H, et al. Cancer chemo-preventive activity naphthoquinones and their analogs from Avicennia Plants. Cancer Lett 2001; 174(2): 135-9.
21. Sharaf M, El-Ansari MA, Saleh NA. New flavonoids from Avicennia marina Fitoterapia 2000; 71(3): 274-7.
22. Zamani Gandomani M, Forouzandeh Malati E. Antinociceptive Effect of Extract of Mangrove (Avicennia Marina) in Male Rats. Med J Tabriz Univ Med Sci 2014; 36(1): 34-9. [in Persian]
23. Zamani Gandomani M, Forouzandeh Molaali E, Zamani Gandomani Z, Madani H, Jamal Moshtaghian S. Evaluation of Anti-Inflammatory Effect of Hydroalcoholic Extract of Mangrove (Avicennia Marina) Leaves in Male Rats Med J Tabriz Univ Med Sci 2012; 34(4): 80-5. [in Persian]
24. Gholami M, Mirazi N. Study of Hepato Protective Effects of Avicenniamarina Hydro Ethanolic Leaves Extract In Male Rats Induced With Carbone Tetrachloride. Armaghane danesh 2016; 20(10): 858-72. [in Persian]
25. Rahbarian R, Sepehri-Moghadam H, Sadoughi SD. The Effects of Aqueous Extract of Launaea acanthodes on Oxidative Stress Parameters of Red Blood Cells in Diabetic Rats. J Rafsanjan Univ Med Sci 2016; 14(10): 865-78. [in Persian]
26. Sepehri-Moghadam H, Rahbarian R, Sadoughi SD. The effect of aqueous extract of Launaea acanthodes (Boiss.) O. Kuntze on the serum level of insulin and blood glucose and histomorphological changes of pancreas in diabetic rats. Feyz 2015; 19(1): 30-7. [in Persian]
27. Rahbarian R, Sepehri Moghadam H, Sadoughi SD. Effect of Aqueous Extract of Launaea acanthodes on Testicular Tissue and Sperm Parameters in Alloxan-Induced Diabetic Rats. Horizon Med Sci 2015; 21(1): 21-9. [in Persian]
28. Mohammadi N, Bayati V, Nejatbakhsh R, Heidari MH, Dadpay M, Tavassol A. Effect of oral morphine on the liver of wistar rat fetuses in the second week of development: a histopathological study. RJMS 2015; 21(129): 1-9. [in Persian]
29. Ali BH, Bashir AK. Toxicological studies on the leaves of Avicennia marina (mangrove) in rats. J Appl Toxicol 1998; 18(2): 111-6.
30. Yeon JY, Bae YJ, Kim EY, Lee EJ. Association between flavonoid intake and diabetes risk among the Koreans. Clin Chimica Acta 2015; 15(439): 225-30.
31. Sahoo G, Mulla NS, Ansari ZA, Mohandass C. Antibacterial Activity of Mangrove Leaf Extracts against Human Pathogens. Indian J Pharm Sci 2012; 74(4): 348-51.
32. Bever BO. Oral hypoglycaemic plants in West Africa. J Ethnopharmacol 1980; 2(2): 119-27.
33. Fang X, Jiang B, Wang X. Purification and partial characterization of an acidic polysaccharide with complement fixing ability from the stems of Avicennia marina. J Biochem Mol Biol 2006; 39(5): 546-55.
34. Rains JL, Jain SK. Oxidative stress, insulin signaling, and diabetes. Free Radic Biol Med 2011; 50(5): 567-75.
35. Rochette L, Zeller M, Cottin Y, Vergely C. Diabetes, oxidative stress and therapeutic strategies. Biochim Biophys Acta 2014; 1840(9): 2709-29.
36. Rho HW, Lee JN, Kim HR, Park BH, Park JW. Protective mechanism of glucose against alloxan-induced [beta]-cell damage: pivotal role of ATP. Exp Mol Med 2000; 32(1): 12-7.
37. Santilli F, Lapenna D, La Barba S, Davi G. Oxidative stress-related mechanisms affecting response to aspirin in diabetes mellitus. Free Radical Biol Med 2015; 80: 101-10.
38. Pitocco D, Zaccardi F, Di Stasio E, Romitelli F, Santini SA, Zuppi C, et al. Oxidative stress, nitric oxide, and diabetes. Rev Diabet Stud 2010; 7(1): 15-25.
39. Pari L, Sankaranarayanan C. Beneficial effects of thymoquinone on hepatic key enzymes in streptozotocin nicotinamide induced diabetic rats. Life Sci 2009; 85(23-26): 830-4.
40. Chang YC, Chuang LM. The role of oxidative stress in the pathogenesis of type 2 diabetes: from molecular mechanism to clinical implication. Am J Transl Res 2010; 2(3): 316-31.
41. Rains JL, Jain SK. Oxidative stress, insulin signaling, and diabetes. Free Radical Biol Med 2011; 50(5): 567-75.
42. Cohen G, Riahi Y, Sunda V, Deplano S, Chatgilialoglu C, Ferreri C, et al. Signaling properties of 4 hydroxyalkenals formed by lipid peroxidation in diabetes. Free Radic Biol Med 2013; 65: 978-87.
43. Murdolo G, Piroddi M, Luchetti F, Tortoioli C, Canonico B, Zerbinati C, et al. Oxidative stress and lipid peroxidation by-products at the crossroad between adipose organ dysregulation and obesity-linked insulin resistance. Biochimie 2013; 95(3): 585-94.
44. Tsao R, Deng Z. Separation procedures for naturally occurring antioxidant phytochemicals. J Chromatogr B Analyt Technol Biomed Life Sci 2004; 812(1-2): 85-99.
45. Noctor G, Lelarge-Trouverie C, Mhamdi A. The metabolomics of oxidative stress. Phytochemistry 2015; 112: 33-53.


XML   English Abstract   Print



دوره 21، شماره 4 - ( دوماه نامه 1396 ) برگشت به فهرست نسخه ها